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白细胞介素-2生物学活性检测

2019.4.07
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zhaochenxu

致力于为分析测试行业奉献终身

实验方法原理IL-2主要由活化T细胞产生,又为T细胞增殖所必需,故称T细胞生长因子( TCell Growth factor, TCGF )。IL-2产生的水平反映T细胞的功能,仅是免疫调节重要的研究对象,而且与临床多种疾病密切相关,CTLL是C57BL/6来源的。鼠杀伤性T淋巴细胞细胞系,由Gills 1977年建立,只有在IL-2存在的培养基中才能生长。因此可作为指示细胞来测定待检样品中IL-2的水平。除CTLL外,丝裂原活化的T淋巴母细胞亦可作为检测IL-2活性的指示细胞。
实验材料

CTLL 

试剂、试剂盒

FCS RPMI16403H-TdRPPOPOPOP二甲苯MTTDMSO

仪器、耗材

培养板收集仪CO2孵箱计数仪

实验步骤

一、3H-TdR掺入法

        
1.  IL-2依赖的CTLL用10 %FCS RPMI1640洗涤
2 次,每次1000 rpm,5 min,除去原培养液中的IL-2

                  

2.  调整活细胞数1×105 /ml

                  

3.  96 孔平底培养板中每孔加100 μl,CTLL悬液(1×104 /孔)

               

4.  加入不同稀释度标准IL-2和待测样品

                  

5.  37 ℃CO2孵箱,培养18~24 h

                

6.  每孔加3H-TdR 0.5 μci/50 μl,4-6 h

         
7.  用细胞收集仪收获于玻璃纤维纸上

                  

8.  干燥后,移入液闪瓶中,加入1 ml闪烁液,于液闪仪中测β射线的cpm值

                  

9.  计算(举例)

  
将标准IL-2不同浓度和待测样品不同稀释度时所获得的cpm值作图,纵轴采用
概率座标(probit),横座标为Log2稀释倍数。从50 %的最高cpm值画一横线,k标准和待检斜线的交点,即可计算出待检样品IL-2的活性单位。

  
如标准品50 %最大cpm值时为1 u/ml,则待测标本1∶4时为1 u/ml,原液则为
4 μ/ml


二、MTT法
 

MTT(3-(4,5-dimcthylthioazol-2-yl)-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide,四甲基偶氮唑盐)可作为线粒体中琥珀酸脱氢酶的底物。当有活细胞存在时,线粒体内琥珀酸脱氢酶可将淡黄色的MTT还原成紫兰色的甲 (Formazan),将结晶的溶解释放,可根据所测的OD值反映活细胞的数量和活性,从而推知待检样品中IL-2的水平。在掌握良好的实验条件下,MTT法的敏感性可接近3H-TdR同位素掺入法。

        
1.  IL-2依赖的CTLL用10 %FCS RPMI1640洗涤2 次,
每次1000 rpm,5 min, 除去原培养液中的IL-2

                  

2.  调整活细胞数1~2×105 /ml

                  

3.  96 孔平底培养板中每孔加100 μl,CTLL悬液(1~2×104 /孔)

               

4.  加入不同稀释度标准IL-2和待检样品,100 μl/孔,每份设3个重复孔

                  

5.  CO2孵箱培养18~24 h

 

6.  每孔加10 μl MTT(5 mg/ml溶于PBS),4 h,37 ℃

        
7.  轻轻吸出150 μl上清,加入150 μl二甲亚砜(DMSO)
或酸性异丙醇(异丙醇溶于0.04 N HCl)

                

8.  溶解10 min,测OD值(570 nM)

  

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注意事项

1.  CTLL细胞洗涤要充分,但操作必须轻柔,离心速度不宜过高,否则影响细胞的增殖。


2.  避免同位素污染。

  
3.  加标准IL-2或待测样品时,按从低浓度到高浓度顺序加。

  
4.  加入3H-TdR最适时机是阴性对照细胞开始全部死亡。

  
5.  CTLL细胞冻存后复苏较困难,用含有丝分裂原条件培养基长期培养容易发
生变异。

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