人类外周血染色体制备

实验概要

人外周血小淋巴细胞，通常都处在G1期（或G0期），一般情况下不进行分裂。如在培养液中加入植物血凝素（PHA），这种小淋巴细胞受到刺激可转化为淋巴母细胞，进入有丝分裂。短期培养后，经秋水仙素处理，低渗和固定，即可得到大量的有丝分裂细胞。人体的1ml外周血内一般含有约1×10⁶～3×10⁶个小淋巴细胞，足够染色体标本制备和分析之用。

主要试剂

1. RPMI-1640按要求10.4克/1000ml配制成溶液，并加入NaHCO₃ 2.0克/1000ml以缓冲pH。完全溶解后经0.22 μm灭菌滤膜抽滤除菌。

2. 肝素钠（肝素）：称取0.2g溶于100ml双蒸水中，浓度为0.2%，15磅20分钟灭菌。

3. 秋水仙碱（秋水仙素〕，生理盐水配制成10μg/ml浓度，15磅20分钟灭菌，分装，置－20℃。

4. 低渗液：0.35％KCl。

5. 固定液（Carnoy固定液） 甲醇∶冰乙酸（3∶l），临时配制。

6. Giemsa工作液：1份原液和10份磷酸缓冲液，临时配制。

7. 磷酸缓冲液：1/15M Na₂HPO₄、1/15M KH₂PO₄等体积混和。

8. 5% NaHCO₃灭菌滤器抽滤备用。

主要设备

5ml注射器（7号针尖），培养瓶、刻度吸管，需15磅灭菌20分钟。离心管、吸管、量筒、载玻片，经洗液按常规清洗、烘干备用。

超净工作台，恒温培养箱，天平，离心机、显微镜等。

实验步骤

1. 细胞培养

1) 培养基的配制：

在超净工作台中，100ml培养基含以下成分和比例：

RPMI-1640 84ml

小牛血清 15ml

PHA 3支

肝素钠 1ml

卡那霉素 终浓度为100单位/ml

以5% NaHCO₃（无菌）或1N HCl调pH至7.2－7.4。

用刻度吸管将培养液分装入培养瓶（10ml/瓶），4℃备用。

2) 采血：酒精消毒皮肤，肘静脉采血0.3—0.5ml，立刻将注射针直接穿过培养瓶的橡胶塞，向10ml培养基中注入30—40滴全血，轻摇匀后置37℃恒温箱培养。

3) 培养：时间为68小时。培养期间，定期轻摇匀，使细胞充分接触培养基。

4) 秋水仙素处理：终止培养前2—4小时，在培养液中加入秋水仙碱（用1ml注射器5号针尖滴加2滴，使终浓度为0.07μg/ml）。

2. 染色体制备

1) 收集细胞：将培养物全部转入洁净离心管中，以1000rpm离心8—10分钟，弃上清液。

2) 低渗处理：向刻度离心管中加入预温37℃的低渗液8ml，用滴管混匀，置37℃恒温水浴中低渗15—25分钟。

3) 预固定：低渗后加入0.5ml固定液，轻轻混匀后1000rpm离心8—10分钟。

4) 一固定：弃上清液，加入5ml固定液，轻轻混匀，静置20分钟。1000rpm离心，弃上清液。

5) 二固定、三固定：同一固定。

6) 制悬液：弃上清液后，视细胞数量多少加入适量固定液制成细胞悬液。

7) 滴片：吸取细胞悬液自10—500px高滴在一张干燥洁净的载玻片上，轻吹散，气干。

8) 染色：1:10 Giemsa染色5—10分钟，细水洗去多余染液，气干。

9) 镜检：低倍镜下寻找分散良好、染色适中的分裂相，油镜下观察染色体形态并计数。