准确的分析方法对于生物化学实验是尤为重要的，在各种生物化学分析技术中，首先要熟练掌握的就是准确的移液技术。为此我们就需要用到各种形式的移液器，其中有一些是我们在化学实验中未用过而在生化实验中却是常用的。下面莱贝就
来具体说说这些各式各样的移液器。
1 滴管
滴管使用方便，可以用于半定量移液，其移液量为1mL～5mL，常用移液量程为2mL，可以更换不同大小的滴头。滴管有长、短两种，新出的一种带刻度和缓冲泡的滴管，能比普通滴管更准确地移液，并且防止液体吸入滴头。
2 移液管(吸管)
移液管（吸管）使用前应先清洗至内壁不挂水珠，1mL以上的吸管可用吸管专用刷刷洗，0.1mL、0.2mL
和0.5mL的吸管可用洗涤剂浸泡，必要时可以用超声清洗器清洗。由于铬酸洗液致癌，要尽量避免使用。若有大量成批的吸管洗后需要冲洗，可以使用冲洗桶，将吸管尖端向上置于桶内，用自来水多次冲洗后再用蒸馏水或无离子水冲洗。
吸管分为两种，一种是无分度的，称为大肚吸管，精确度较高，其相对误差A
级为0.7％~0.8％，B 级为1.5％~0.16％，液体自标线流至口端(留有残液)，A 级等待15s，B
级等待3s。另一种吸管为有分度吸管，管身为一粗细均匀的玻璃管，上面均匀刻有表示容积的分度线，其准确度比大肚吸管要低，相对误差A
级为0.8％～0.2％，B 级为1.6％～0.4％，A 级、B 级在吸管身上有A、B
字样，有”快”字则为快流式，有”吹”字则为吹出式，无”吹”字的吸管不可以将管尖的残留液吹出。吸、放溶液前要先用吸水纸擦拭管尖。
3 微量进样器
微量进样器常常被用作气相和液相色谱仪的进样器，在生化实验中主要是用作电泳实验的加样器。
一般可以分为无存液和有存液两种。
(1)10μL 以下的极微量液体进样。
无存液微量进样器：进样器的不锈钢芯子直接通到针尖端处，不会出现存液。
(2)10μL～100μL
有存液微量进样器：不锈钢的针尖管部分是空管，进样器的柱塞不能到达，因而管内会存有空气或液体，其使用注意事项是：①不可吸取浓碱溶液，以免腐蚀玻璃和不锈钢零件；②因为有存液，所以吸液时要来回多拉几次，将针尖管内的气泡全部排尽；③针尖管内孔极小，使用后尤其是吸取过蛋白质溶液后，必须立即清洗针尖管，防止堵塞。若遇针尖管堵塞，不可以用火烧，只能用φ0.1mm
的不锈钢丝耐心串通；④进样器未润湿时不可来回干拉芯子，以免磨损而漏气；⑤若进样器内发黑，则说明有不锈钢氧化物，可一用芯子蘸少量肥皂水，来回拉几次就可以清除掉。
4 自动移液器
这种自动移液器在生化实验中大量地使用（比如Eppendorf、Biohit以及IKA移液器），它们主要用于多次重复的快速定量移液，可以只用一只手操作，十分方便。移液的准确度(即容量误差)为±(0.5％～1.5％)，移液的精密度(即重复性误差)更小些，为≤0.5％。
移液器可以分为二种：一种是固定容量的，比较常用的有100μ
L等多种规格。每种移液器都有其专用的聚丙烯塑料吸头，吸头通常是一次性使用，当然也可以超声清洗后重复使用，而且此种吸头还可以进行120℃高压灭菌；另一种是可调容量的移液器，常用的有200μL、
500μL 和1000μL 等几种规格。
可调式移液器（Eppendorf、Biohit以及IKA移液器）的操作方法是用拇指和食指旋转移液器上部的旋钮，使数字窗口出现所需容量体积的数字，在移液器下端插上一个塑料吸头，并旋紧以保证气密，然后四指并拢握住取液器上部，用拇指按住柱塞杆顶端的按钮，向下按到第一停点，将移液器的吸头插入待取的溶液中，缓慢松开按钮，吸上液体，并停留1～2秒钟(粘性大的溶液可适当加长停留时间)，将吸头沿器壁滑出容器，用吸水纸擦去吸头表面可能附着的液体，排液时吸头接触倾斜的器壁，先将按钮按到第一停点，停留一秒钟(粘性大的液体要加长停留时间)，再按压到第二停点，吹出吸头尖部的剩余溶液，如果不便于用手取下吸头，可按下除吸头推杆，将吸头推入废物缸。
自动移液器（Eppendorf、Biohit以及IKA移液器）的使用注意事项是：
①吸取液体时一定要缓慢平稳地松开拇指，绝不允许突然松开，以防将溶液吸入过快而冲入移液器内腐蚀柱塞而造成漏气。
②为获得较高的精度，吸头需预先吸取一次样品溶液，然后再正式移液，因为吸取血清蛋白质溶液或有机溶剂时，吸头内壁会残留一层”液膜”，造成排液量偏小而产生误差。
③浓度和粘度大的液体，会产生误差，为消除其误差的补偿量，可由试验确定，补偿量可用调节旋钮改变读数窗的读数来进行设定。
④可用分析天平称量所取纯水的重量并进行计算的方法，来校正移液器，1mL 蒸馏水20℃时重0.9982g。
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