实验方法原理 1975年，Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合，形成的杂交细胞既可产生抗体，又可无限增殖，从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。这一技术上的突破不仅为医学与生物学基础研究开创了新纪元，也为临床疾病的诊、防、治提供了新的工具。

制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产，要经过几个月的一系列实验步骤。

实验材料 小鼠骨髓瘤细胞

试剂、试剂盒 NCS

仪器、耗材 CO2孵箱培养板

实验步骤

一、细胞融合前准备

1.  免疫方案

选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功，获得高质量的McAb至关重要。一般要在融合前两个月左右确立免疫方案开始初次免疫，免疫方案应根据抗原的特性不同而定。

（1）颗粒性抗原免疫性较强，不加佐剂就可获得很好的免疫效果。下面以细胞性抗原为例的免疫方案

初次免疫　　　              1×107/0.5 ml ip （腹腔内注射）

↓　2～3周后

第二次免疫　　              1×107/0.5 ml ip

↓　3周后

加强免疫（融合前三天）1×107/0.5 ml ip或iv（静脉内注射）

↓

取脾融合

（2）可溶性抗原免疫原性弱，一般要加佐剂，常用佐剂：福氏完全佐剂，福氏不完全佐剂。要求抗原和佐剂等体积混合在一起，研磨成油包水的乳糜状，放一滴在水面上不易马上扩散呈小滴状表明已达到油包水的状态。商品化福氏完全佐剂在使用前须振摇，使沉淀的分枝杆菌充分混匀。

初次免疫　 Ag　1～50 μg　加福氏完全佐剂皮下多点注射（一般0.8～1 ml　0.2 ml/点）

↓3周后

第二次免疫　剂量同上，加福氏不完全佐剂皮下或ip（ip剂量不宜超过0.5 ml）

↓3周后

第三次免疫　剂量同上，不加佐剂，ip（5～7天后采血测其效价，检测免疫效果）

↓2～3周后

加强免疫，剂量50～500 μg为宜，ip或iv

↓3天后

取脾融合

目前，用于可溶性抗原（特别是一些弱抗原）的免疫方案也不断有所更新，如

①将可溶性抗原颗粒化或固相化，一方面增强了抗原的免疫原性，另一方面可降低抗原的使用量。

②改变抗原注入的途径，基础免疫可直接采用脾内注射。

③使用细胞因子作为佐剂，提高机体的免疫应答水平，促进免疫细胞对抗原反应性。

2.  饲养细胞

在制备单克隆抗体过程中，许多环节需要加饲养细胞，如：在杂交瘤细胞筛选、克隆化和扩大培养过程中，加入饲养细胞是十分必要的。常用的饲养细胞有：小鼠腹腔巨噬细胞（较为常用）、小鼠脾脏细胞或小鼠胸腺细胞，也有人用小鼠成纤维细胞系3T3经放射线照射后作为饲养细胞，使用比较方便，照射后可放入液氮罐长期保存，随用随复苏。

小鼠腹腔巨噬细胞的制备

小鼠采用与免疫小鼠相同的品系，常用BaLb/c小鼠6～10 周龄

↓

拉颈处死，浸泡于75 ％酒精，消毒3～5 分钟

↓

用无菌剪刀剪开皮肤，暴露腹膜

↓

用无菌注射器注入6～8 ml培养液

↓

反复冲洗，吸出冲洗液

↓

放入10 ml离心管，1200 转/分离心5～6 分钟

↓

用20 ％小牛血清（NCS）或胎牛血清（FCS）的培养液混悬，调整细胞数1×105 /ml

↓

加入96孔板，100 μl/孔

↓

放入37 ℃，CO2孵箱培养

一般饲养细胞在融合前一天制备，一只小鼠可获得5～8×106 腹腔巨噬细胞，若用小鼠胸腺细胞作为饲养细胞时，细胞浓度为5×106 /ml，小鼠脾细胞为1×106 /ml，小鼠的成纤维细胞（3T3）1×105 /ml，均为100 μl/孔。

3.  骨髓瘤细胞

骨髓瘤细胞系应和免疫动物属于同一品系，这样杂交融合率高，也便于接种杂交瘤细胞在同一品系小鼠腹腔内产生大量McAb。

常用骨髓瘤细胞系有：NS1、SP2/0、X63 Ag8.653等。

骨髓瘤细胞的培养适合于一般的培养液，如RPMI1640，DMEM培养基。小牛血清的浓度一般在10～20 ％，细胞的最大密度不得超106 /ml，一般扩大培养以1∶10稀释传代，每3～5 天传代一次。细胞的倍增时间为16～20 小时，上述三株骨髓瘤细胞系均为悬浮或轻微贴壁生长，只用弯头滴管轻轻吹打即可悬起细胞。

一般在准备融合前的两周就应开始复苏骨髓瘤细胞，为确保该细胞对HAT的敏感性，每3～6月应用8～AG（8氮杂鸟嘌呤）筛选一次，以防止细胞的突变。

保证骨髓瘤细胞处于对数生长期，良好的形态，活细胞计数高于95 ％，也是决定细胞融合的关键。

4.  免疫脾细胞

免疫脾细胞指的是处于免疫状态脾脏中B淋巴母细胞和浆母细胞。一般取最后一次加强免疫3天以后的脾脏，制备成细胞悬液，由于此时B淋巴母细胞比例较大，融合的成功率较高。

脾细胞悬液的制备

在无菌条件下取出脾脏，用不完全的培养液洗一次，置平皿中不锈钢筛网上，用注射器针芯研磨成细胞悬液后计数。一般免疫后脾脏体积约是正常鼠脾脏体积的2倍，细胞数为2×108左右。

二、细胞融合，选择杂交瘤

1.  细胞融合流程

（1）取对数生长的骨髓瘤细胞SP2/0，1000 rpm离心5 分钟，弃上清，用不完全培养液混悬细胞后计数，取所需的细胞数，用不完全培养液洗涤2 次。

（2）同时制备免疫脾细胞悬液，用不完全培养液洗涤2 次。

（3）将骨髓瘤细胞与脾细胞按1∶10或1∶5的比例混合在一起，在50 ml塑料离心管内不完全培养液洗1 次，1200 rpm，8分钟。

（4）弃上清，用滴管吸净残留液体，以免影响PEG的浓度。

（5）轻轻弹击离心管底，使细胞沉淀略加松动。

（6）在室温下融合

①30 秒内加入预热的1 ml45 ％PEG（Merek，分子量4000）含5 ％DMSO，边加边搅拌。

②作用90 秒钟，若冬天室温较低时可延长至120 秒钟。

③加预热的不完全培养液，终止PEG作用，每隔2 分钟分别加入1 ml，2 ml，3 ml，4 ml，5 ml和10 ml。

（7）离心，800 rpm，6 分钟。

（8）弃上清，先用6 ml左右20 ％小牛血清RPMI1640轻轻混悬，切记不能用力吹打，以免使融合在一起的细胞散开。

（9）根据所用96孔培养板的数量，补加完全培养液，10 ml一块96孔板。

（10）将融合后细胞悬液加入含有饲养细胞的96孔板，100 μl/孔，37 ℃、5 ％CO2孵箱培养。

一般一块96孔板含有1×107脾细胞。