神经细胞分散培养

一、设备
无菌操作设备。
二、大型设备
CO2培养箱
恒温5%、10%CO2维持培养液中pH值
倒置显微镜：用于每天观察贴壁细胞生长情况
解剖显微镜，用于准确地取材
常温冰箱：-4℃，用于保存各种培养液，解剖液和鼠尾胶
低温冰箱：-20℃--80℃，用于储存血清酶，贵重物品和试剂
电热干烤箱：用于消毒玻璃器皿
高压消毒锅：用于消毒培养皿，手术器械
过滤器：配制解剖液、培养液，必须过滤后才可使用，以去除细菌
渗透压仪，pH剂，天平等
三、培养器皿及手术器械
1、培养皿：常用35mm塑料及玻璃皿，解剖取材用15mm-90mm直径。
2、培养板，24-40孔，可用于开放培养。
3、培养瓶：
4、吸管，常用1，5，10ml，均需泡酸、洗涤、灭菌后方可使用。
5、各类培养液贮存器。
6、小型手术器械。
准备：
一、配制培养液
（1）解剖液：以无机盐（去除Ca2+ , Mg2+）加葡萄糖配制成PBS缓冲液，保持一定的渗透压和pH值。
（2）基础培养基（MEM）：主要为多种氨基酸，加入葡萄糖，双蒸馏水溶解。
（3）接种培养液：用于胰酶消化后的细胞分散，做成细胞悬液，其成分为MEM含1%谷氨酰胺，另加入10%马血清，当天配制。
（4）维持培养液：接种后24h，全部换成此液，后每2周换一次，每次换1/2。其成分为MEM中含5%马血清，1%谷氨酰胺，及适量的支持性营养物质。
二、培养基质 常用鼠尾胶、小牛皮胶，多聚赖氨酸，再涂胶
三、消毒培养皿的备用。所有培养器皿均需清水冲洗2-3d，达两次ddH2O，每遍洗刷3-4次，加塞包装，置于烤箱中干燥消毒，于培养前1天进行。
神经细胞分散培养
（一）选材 常用胚胎动物或新生鼠神经组织。鸡胚常用胚龄6-8d，新生鼠或胎鼠（12-14d）或人胚胎。不过也有认为与组织相关。如大白鼠胚胎以19d为宜，小鼠以18d为宜，大鼠纹状体以10d为宜；若纹状体与黑质联合培养的大鼠胚，则黑质以13d，纹状体18-21d为宜；小脑以20-21d小鼠胚胎，所获蒲氏细胞成活率高，颗粒细胞正在分化；脊髓与DRG联合培养，常用4-7d鸡胚或12-14d小鼠胚胎，取材易，神经成活率高。
（二）取材。脑则取出相应组织，在解剖液中先剪碎，以使胰酶消化。脊髓则固定于琼脂板上，用小刀将其要成背腹两侧，分别培养。

（三）细胞分离与接种。神经组织用0.125-0.25%胰蛋白酶在37℃孵育30min，移入接种液，停止消化，并洗去胰蛋白酶液，用细口吸管吹打细胞悬液，使其充分分散，如此多次，待沉淀后吸出上层细胞悬液，计数，预置细胞密度，接种于培养皿（1×106），做电生理应为5×105或更低。
（四）抑制胶质细胞生长。培养3-5d后，也有人认为培养7d后，用阿糖胞苷，或5-FU抑制神经胶质细胞的生长。
（五）观察。接种6-12h，开始贴壁，并有集合现象，细胞生长突起明显，5-7d胶质细胞增生明显，7-10d胶质细胞成片于神经细胞下面，形成地毯，2周时神经细胞生长最丰满，四周晕光明显，一个月后，有些神经细胞开始退化，变形，甚至出现空泡，一般培养2-4周最宜。

但神经细胞只能增大，而不能增殖，只能原代，不能传代，不会有细胞周期，而且随培养时间的延长，细胞数量在下降，但胶质细胞可以，神经胶质细胞也可以。在培养过程中，早期9-12d时，有较多的神经细胞死亡，这是第一次死亡阶段，应注意保持条件的恒定。在此之后存活下去的细胞一般突起长而多，且相互形成突触。