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淋巴细胞转化试验(MTT)原理=材料和方法

2020.9.15
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

(一)原理:

四甲基偶氯唑盐(MTT)可作为线粒体中琥珀酸脱氢酶的底物。当有活细胞存在时,线粒体内琥珀酸脱氢酶可将淡黄色的MTT还原成紫兰色的甲臢,将结晶的甲臢溶解释放后,可根据所测的OD值反映活细胞的数量和活性,从而推知待测样品的水平。

(二)材料:

MTT、电子天平、PBS液、二甲基亚砜、无菌针头过滤器、细胞计数板、台盼兰、无菌操作台,CO2培养箱,酶标仪,-20℃冰箱。用称取50mg的MTT,溶于10ml后,终浓度为5mg/ml,过滤除菌,无菌EP管分装,-20℃避光保存。丝裂原:PHA、ConA、PWM或其他丝裂原

(三)方法:

1、脾细胞制备:

(1)小鼠颈椎脱臼处死,75%乙醇浸泡3分钟,取出小鼠置于无菌纸上,左腹侧朝上;

(2)在小鼠左腹侧中部剪开小口,撕开皮肤,暴露腹壁,可见红色长条状脾脏;

(3)在脾脏下侧提起腹膜,剪开后上翻,暴露脾脏,用镊子提起脾脏,眼科剪分离脾脏下面的结缔组织,取出脾脏。放入盛有5ml Hanks液的培养皿中;

(4)制备脾细胞悬液

①钢网研磨法:无菌取脾,将脾脏放置不锈钢网(100或200目)上,置于盛有适量无菌Hanks液的小平皿中,用镊子轻轻将脾撕碎,用注射器针芯轻轻研压脾脏,制成单细胞悬液;经200目筛网过滤,用Hanks液洗3次,每次离心1000r/min 5-10min, (或1500rpm,4-7min)。取出100ul,稀释后在细胞计数板上进行细胞计数,并用台盼兰染色(0.1ml0.6%台盼兰+0.1ml1.7%Nacl液+0.2ml细胞悬液,混匀),计算细胞存活率(应在95%以上)。调整细胞浓度为5´105/ml。

②梳刮法:脾脏可用镊子轻轻梳刮,避免将脾脏弄成碎片,将细胞悬液吸入离心管中,自然沉降5分钟,将悬液移至另一离心管中,弃去较大的组织块,离心沉淀细胞;



③酶消化法:将脾脏用镊子夹碎,加入400u/ml胶原酶(III型)5ml/只脾脏,37度消化20分钟,用尼龙网过滤,得到单细胞悬液。

注:①一般6~8周龄小鼠,根据品系不同,可得5~20×107细胞/只小鼠;

②手术器械灭菌:术前高压灭菌外,也可将手术器械泡在95%酒精的小容器中,使用前取出器械,在酒精灯上烧灼去除酒精,即可保证无菌,此法较为简便。

2、淋巴细胞增殖反应:

将5´105/ml脾细胞悬液加入到96孔培养板中,200ul/孔,每一份脾细胞悬液分装3n个孔,3(n-1)孔加ConA(5ug/mL),另3个孔不加ConA作为对照。置5% CO2,37℃培养48-72h,在培养结束前4-6小时,于培养板各孔内加入5mg/mlMTT液,10ul/孔。37℃培养4-6小时。
4. 1000g离心10分钟弃上清,各孔内加入150μlDMSO,溶解10min,30分钟内(或加2%SDS100ul/孔,过夜。,或干燥后,各孔内加入0.01M盐酸—异丙醇100ul)用酶标测定仪测OD值,测定波长570nm。
实验结果
将实验组和对照组三个复孔的OD值平均。
转化值=实验组的平均OD值-对照组的平均OD值。
注意事项
(1)由于本实验需要培养3天,才能观察结果。因此,在操作时应注意无菌操作,避免细菌污染,导致实验的失败。
(2)细胞操作要轻柔、迅速,以免细胞损伤影响实验结果。


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