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大鼠骨髓原代培养用于生产MSCs

2020.9.15
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

试剂和材料:

  1. 完全培养基(CCM):α-MEM:α-低限量基础培养基,含谷氨酰胺,无核苷酸或脱氧核苷酸;添加:20%附加L-谷氨酰胺 2mmol/L、经F杂交瘤纯化,非热灭活、青霉素100U/ml、链霉素100μg/ml。含0.2μg/ml两性霉素B。过滤除菌。储存于4℃,不超过2周;

2.A;

3.塑料组织培养Petri培养皿,15cm直径;

4.聚丙烯离心管,15ml和50ml;

5.0.85%台盼蓝盐溶液;

6.改良的Neubauer血细胞计数器;

7.Eendorf 5417C微量离心器或同等设备;

实验方法:

  1. 从一根股骨所得的骨髓悬液中取出10μl,与10μl台盼蓝混合,评估存活率,确保高于80%;

2.1000g离心10min沉淀骨髓;

3.用25ml预热的含抗真菌药物的CCM重悬骨髓(处理大鼠骨髓细胞使用抗真菌药物,人骨髓细胞不使用);

4.将25ml细胞悬液加入到15ml直径的组织培养板中,37℃,5%CO2环境下至少孵育15h;

5.从培养箱中取出培养板,吸出培养基;

6.用20ml预热的A润洗单层细胞。重复润洗过程3次,将最后的洗涤产物加入30ml预热的含抗菌药物的新鲜CCM中(只有大鼠细胞使用抗真菌药物);

7.如有需要每隔两天重复步骤6,维持6—14天;

8.每3天用倒置显微镜观察单层细胞。贴壁、成纤维细胞样的MSCs集落可以在培养板中清洗可见。某些情况下,这可能是造成细胞污染的信号,但这些细胞随着细胞传代过程可被去除。当培养物达到40%—50%汇合时,按照MSCs自我更新的集落形成单位测定的方法处理细胞。这些MSCs标记为0代。

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