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流式细胞仪的详细使用程序(二)

2021.4.29
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

三.用CELLQuest进行仪器的设定和调整  

1 .从苹果画面中选取CELLQuest,进入CELLQuest后在File指令栏中打开合适的获取模式文件。  

2 .从屏幕上方Acquire指令栏中,选取ConnecttoCytometer(快捷键:+B)进行电脑和仪器的连机。将出现的AcquisitonControl对话框移至合适位置。  

3 .从Cytometer指令栏中,开启Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四个对话框,并将它们移至屏幕右方,以便获取数据时随时调整获取条件。也可以用+1,2,3,4获得此四个对话框。  

4 .在Detectors/Amps对话框中,先为每个参数选择适当的倍增模式(amplifiermode):线性模式Lin或对数模式Log。一般进行细胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴细胞亚群时,FSC和SSC多以线性模式Lin测量,且DDMParam选择FL2,而FL1,FL2与FL3则以对数模式Log测量;分析细胞DNA含量时,FSC,SSC,FL1,FL2,FL3皆以Lin进行测量,且DDMParam选择FL2;分析血小板表型时,FSC,SSC,FL1,FL2,FL3等均以Log进行测量。 
5 .放上待检测的样品,将流式细胞仪设定于RUN,流速可在HIGH或LOW上。  

6 .在AcquisitonControl对话框中,选取Acquire,开始获取细胞。在以下的仪器调整过程中随时选取Pause,Restart以观察调整效果。未完全调整好之前不要去掉SETUP前的“3”。  

7 .在Detectors/Amps对话框中,调整FSC和SSC探测器中的信号倍增度:PMTvoltages(粗调)与AmpGains(细调),使样品信号出现在FSC-SSC点图内,且三群细胞合理分布。  

8 .在Threshold对话框中选择适当的参数设定Threshold,并调整Threshold的高低,以减少噪音信号(细胞碎片)。一般做细胞表型时用FSC-H而做DNA时用FL2-H。Threshold并不影响检测器对信号的获取,但可改善画面质量。  

9 .从屏幕左列绘图工具中选取Region(区域),并在靶细胞周围设定区域线,即通常所说的门。圈定合适的细胞群可使仪器调整更为容易。  

10 .在Detectors/Amps对话框中,调整荧光检测器(FL1,FL2,FL3,FL4等)的倍增程度。根据所用的荧光阴性对照样品调整细胞群,使之分布在正确的区域内。  

11 .在Compensation对话框中,根据所用的调补偿用标准荧光样品调整双色(或多色)荧光染色所需的荧光补偿。比如应该为FL1+FL2-的细胞群却分布在FL1+FL2+区域内,则需调大FL2-?%FL1中的“?”,并从FL1-FL2点图中观察新的调整是否恰当  

12 .在Status对话框中可见:LaserPower:正常值—Run/Ready为14.7mW,Standby为5mW;Lasercurrent:正常值为6Amps左右。  

13 .调整好的仪器设定可在InstrumentSettings对话框中储存,下次进行相同实验时可调出使用,届时只需微调即可。  

X.本计算机中已有三个名叫储存于FACStationG3\BDApplications\CELLQuestFolder\IMM-InstrSettings及FACStationG3\BDFiles\InstrumentSettingsFiles\CalibFile和Mast-Cell-Set的参数文件,前二者可用于分析人白细胞,后者用于分析小鼠肥大细胞。  

四.通过预设的获取模式文件进行样品分析  

1 .从苹果标志中选择CELLQUEST,新视窗出现后从File指令栏中选择Open,打开预设的获取模式文件。  

2 .从屏幕上方Acquire指令栏中,选取ConnecttoCytometer进行电脑和仪器的连机。将出现的AcquisitonControl对话框移至合适位置。

3 .从Cytometer指令栏中选取InstrumentSettings,在其对话框中选择Open以调出以前存储的相同实验的仪器设定,按Set确定。  

4 .在Acquire指令栏中,选择Acquisition&Storage决定储存的细胞数,参数,信号道数。其中Resolution在做细胞表面标志时选择256,做DNA时选择1024。ParameterSaved…则根据不同的检测对象选择不同的参数。  


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