实验材料 | |
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试剂、试剂盒 | |
仪器、耗材 | |
实验步骤 | 一、蛋白标记1.将染料溶人 250ul 水中,每 10ug 待标记蛋白中,加入 5ul 的染料溶液。蛋白质浓度不能低于 100 ug/ml。 在这样的条件下,蛋白质被标记的程度与蛋白质浓度无密切关系。虽然制造商推荐标记时的 pH 值为 9.3,但一般都在 pH 值为 7.5 的 PBS 缓冲液中进行标记。低 pH 有利于染料和蛋白质的氨基末端相连,而高 pH 值则导致染料与赖氨酸残基发生非选择性的掺人。 2.将染料和蛋白质的混合液在室温条件下孵育 30 min,使染料和蛋白质分子充分反应。 3.加入 0.1 倍体积含有 500rnmol/L 甘氨酸(pH8.0) 的 PBS 终止反应,在室温条件下再游育反应管 30 min。 4.用层析法或透析法除去未掺入蛋白中的染料。 若蛋白带有亲和标记(如 His6-标记或 GST-标记),用亲和层析方法,可以很方便地除去未发生掺人的染料。 二、用探针标记阵列5.将探针缓冲液和被荧光标记的蛋白质混合后,制成探针溶液。 探针缓冲液的组分决定于被标记的蛋白质。通常缓冲液中应含有盐、去污剂和 BSA。以尽可能地避免非特异性反应的发生。另外,缓冲液中应含有还原剂、金属离子或所需的其他因子。一开始,建议使用含有 0.1% Tween-20(体积分数)和 0.O1mg/ml BSA 的 PBS(pH7.5)。被标记蛋白的最佳浓度,因不同的实验而各不相同。开始时可先采用 1ug/ml,这对约 50kDa 的蛋白质来说相当于 20nmol/L。 所用缓冲液的体积由具体实验而定。蛋白质浓度范围可从 1nmol/L~1umol/L。 6.用带有荧光标记的蛋白质作为探针标记蛋白阵列。 单阵列玻片操作方法 (1)将 CoverWell 玻片孵育箱放在桌子上,有衬垫的一面朝上。 (2)加入 550^1 探针标记溶液。 (3)将微阵列玻片慢慢沉下,置于 CoverWell 上方,带有阵列的一面朝下。 (4)插入玻片并轻轻压好玻片,注意要让 CoverWell 牢牢地封住玻片。 若操作正确得当,溶液会漫过玻片表面,且不会产生气泡。 多阵列玻片操作方法 (1)对每个阵列来说,在玻片正确的一面,加上 10?30 沁的标记蛋白。不要用盖玻片或 CoverWell 覆盖阵列。 (2)将玻片放入一个保湿器中。 7.在室温条件下,孵育玻片 lh。 8.用 PBST 将玻片轻微冲洗后,再用 PBST 把玻片冲洗 3 遍,每次 2~3 min。 9.用 PBS(没有 Tween-20 的)将玻片轻微冲洗后,用一配置有可放置玻片转子的离心机,在 200 g 条件下离心 30s,以去除残留的缓冲液。 若没有合适的转子配置,也可以采用通氮气流的方法来干燥玻片。 10.用荧光玻片扫描仪检测玻片的成像(参见「10.8.4 阅读和解析蛋白质陈列)。 |