实验材料 | |
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试剂、试剂盒 | |
仪器、耗材 | |
实验步骤 | 1. 每个时间点和每个样品准备 0.5 × 107 ~2 × 107 细胞, 每 0 .5 × 107 ~2 × 107 细胞用 2 ml 0.1~0.2 mCi/ml [35S] 甲硫氨酸脉冲标记 10~30 min (见基本方案步骤 1~4,或见备择方案 1 步骤 1~5)。 2. 去除 [35S] 甲硫氨酸的工作溶液,用 10 ml 37℃ 的示踪培养基洗一次,并加入 10 ml 37℃ 的示踪培养基。 3. 37℃ 培养到预期时间。拧紧试管盖子在旋转情况下培养细胞悬液。在 032 培养箱里孵育贴壁细胞。 4. 刮取贴壁细胞并转移到 15 ml 离心管。收集刮取的细胞或细胞悬浮液于 4℃ 300 g 离心 5 min。 5. 可选:通过 TCA 沉淀法测定标记掺入的量(见辅助方案)。 展开 |
注意事项 | 1. 将2倍体积含有过量未标记甲硫氨酸(15mg/L)的示踪培养基直接加入到标记混合物中,能够快速终止标记反应。 2. 示踪≤2 h,细胞悬液的最终浓度应该是 2 × 106 细胞/ml,或示踪>2 h,用 0.5 × 106 细胞/ml。 对贴壁细胞而言,加 10 ml/100 mm 平皿。 |
其他 | 1. 上清可以弃掉,也可以收集起来用于分析分泌或脱落到培养基中的蛋白质。 2. 如果细胞沉淀不马上使用的话,见基本方案步骤7。 |