细胞培养基
市场上可提供干粉培养基和液体培养基:
干粉培养基需使用者自己配制并灭菌,其优点是价格便宜。缺点是配制过程繁琐,质量不易控制;
液体培养基是由专业厂家按标准规模化生产,不仅质量得到保证,而且使用十分方便
常用的培养基种类:
RPMI-1640(标准型)、DMEM-高糖(标准型)、DMEM-低糖(标准型)、McCoys 5A、 M199、F10等
1000 ml RPMI 1640培养基
RPMI 1640 干粉培养基10.4g(1包)
蒸馏水 400ml
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磁力搅拌至完全溶解
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加三蒸馏水定容至1000ml
在超净台内无菌条件下,用灭菌后的并置有0.22μm孔径滤膜的过滤器除菌,并分装成200 ml/瓶,-20℃保存备用。
用前取一瓶溶解,每200 ml培养液加灭活的小牛血清至终浓度为10%,即加22ml。再加青霉素和链霉素至终浓度各为100 U/ml。
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细胞培养液
血清
热灭活:56℃, 30 分钟加热已完全解冻的血清
热灭活目的:灭活血清中的补体成分。如果不做细胞因子和免疫相关的实验,建议血清不要灭活。因为热处理会造成血清沉淀物显著增多,还会影响血清的质量。灭活后严重影响细胞生长速度,且细胞贴壁率降低。
血清中的沉淀物:
— 絮状物:血清中的脂蛋白变性及解冻后血清中纤维蛋白造成,这些絮状物不会影响血清本身的质量。可用离心3000 rpm, 5 分钟去除,也可不用处理
— 显微镜下“小黑点”:经过热处理过的血清,沉淀物的形成会显著增多。有些沉淀物在显微镜下观察象“小黑点”,常误认为血清受污染。一般情况下,此小黑点不会影响细胞生长,但如果怀疑血清质量,则应立即停止使用,更换另一批号的血清
平衡盐液体
组织细胞培养中常用的基本液体,可以维持渗透压、调节pH值、供给细胞生存所需的能量和无机离子成分,用于洗涤组织、细胞等
PBS(Phosphate-Buffered Sallines):
KCl 0.20g KH2PO4 0.20g
NaCl 8.00g Na2HPO4•7H2O 2.16g
DPBS(Dulbecco’s Phosphate-Buffered Sallines)标准型
CaCl2(无水氯化钙) 0.10g KCl 0.20g
KH2PO4 0.20g MgCl2·6H2O 0.10g
NaCl 8.00g Na2HPO4·7H2O 2.16g
D-Hanks’ 平衡盐溶液(D-Hanks Balanced Salt Solutions, D-HBSS)
KCl 0.40g KH2PO4 0.06g
NaCl 8.00g NaCO3 0.35g
Na2HPO4 0.048g D-Glucose 1.00g Phenol Red 0.01g
消化液:分离组织和分散细胞
— 常用的有胰蛋白酶和二乙胺四乙酸二钠(EDTA)两种溶液
— 单独或混合使用
胰蛋白酶溶液
— 主要作用:使细胞间的蛋白质水解,使细胞相互离散
— 消化细胞时,加入一些血清或含血清的培养液,能终止消化作用
— 胰蛋白酶溶液配制
1、称取胰蛋白酶粉末置烧杯中,用少许D-Hanks 平衡盐溶液调成糊状,再补足D-Hanks 平衡盐溶液,搅拌混匀,置室温4 小时或冰箱过夜,不断搅拌振荡
2、次日,先用滤纸粗滤,再进行过滤除菌,分装入瓶中, -20℃保存备用(以免分解失效),常用浓度为0.25% (0.1%-0.5%)
3、胰蛋白酶溶液偏酸,使用前可用碳酸氢钠溶液调pH 至7.2 左右