实验概要
本实验以哺乳动物新鲜组织为材料，学习基因组DNA提取的一般方法。
实验原理
基因组DNA的提取通常用于构建基因组文库、Southern杂交(包括RFLP)及PCR分离基因等。利用基因组DNA较长的特性，可以将其与细胞器或质粒等小分子DNA分离。加入一定量的异丙醇或乙醇，基因组的大分子DNA即沉淀形成纤维状絮团飘浮其中，可用玻棒将其取出，而小分子DNA则只形成颗粒状沉淀附于壁上及底部，从而达到提取的目的。在提取过程中，染色体会发生机械断裂，产生大小不同的片段，因此分离基因组DNA时应尽量在温和的条件下操作，如尽量减少酚/氯仿抽提、混匀过程要轻缓，以保证得到较长的DNA。一般来说，构建基因组文库，初始DNA长度必须在100kb以上，否则酶切后两边都带合适末端的有效片段很少。而进行RFLP和PCR分析，DNA长度可短至50kb，在该长度以上，可保证酶切后产生RFLP片段(20kb以下)，并可保证包含PCR所扩增的片段(一般2kb以下)。
不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同，分离方法也有差异。在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法，以获得可用的DNA大分子。尤其是组织中的多糖和酶类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用，因此用富含这类物质的材料提取基因组DNA时，应考虑除去多糖和酚类物质。
主要试剂
1. 分离缓冲液：10mmol/L Tris·Cl pH7.4，10mmol/L NaCl，25mmol/L EDTA。
2. 10% SDS
3. 蛋白酶 K (20mg/ml或粉剂)
4. 乙醚
5. 酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)
6. 无水乙醇及70%乙醇
7. 5mol/L NaCl
8. 3mol/L NaAc
9. TE等
主要设备
1. 移液管
2. 高速冷冻离心机
3. 台式离心机
4. 水浴锅
实验材料
哺乳动物新鲜组织。
实验步骤
1. 切取组织5g左右，剔除结缔组织，吸水纸吸干血液，剪碎放入研钵(越细越好)。
2. 倒入液氮，磨成粉末，加10ml分离缓冲液。
3. 加1ml 10% SDS，混匀，此时样品变得很粘稠。
4. 加50ul或1mg 蛋白酶 K，37℃保温1-2小时，直到组织完全解体。
5. 加1ml 5mol/L NaCl，混匀，5000rpm离心数秒钟。
6. 取上清液于新离心管，用等体积酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)抽提。待分层后，3000rpm离心 5分钟。
7. 取上层水相至干净离心管，加2倍体积乙醚抽提(在通风情况下操作)。
8. 移去上层乙醚，保留下层水相。
9. 加1/10 体积3mol/L NaAc，及2倍体积无水乙醇颠倒混合沉淀DNA。室温下静止10-20分钟，DNA沉淀形成白色絮状物。
10. 用玻棒钩出DNA沉淀，70%乙醇中漂洗后，在吸水纸上吸干，溶解于1ml TE中，-20℃保存。
11. 如果DNA溶液中有不溶解颗粒，可在5000rpm短暂离心，取上清; 如要除去其中的RNA，可加5μl RNaseA(10μg/μl)，37℃保温30分钟，用酚抽提后，按步骤9-10重沉淀DNA。
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