1. 接种一个单菌落于50 ml LB培养液中,于37°C中速摇床培养过夜(250 r/min)。 2. 往一个2 L的烧瓶中加人400 ml LB培养液,再加入4 ml过夜培养液,于37°C摇床(250 r/min)培养至 OD590为 0. 375。 这一步的目的是使细菌快速生长(对数早期或中期)。 3. 将培养液分装到8个50 ml预冷无菌的聚丙烯管中,于冰上放置5〜10 min。 4. 于4°C,1600 g离心7 min。细胞沉淀用10 ml冰冷的CaCl2溶液重悬。 5. 于4°C,1100 g离心5 min。细胞沉淀用10 ml冰冷的CaCl2溶液重悬,冰上放置30min。 6. 于4°C,1100 g离心5 min。用2 ml冰冷的CaCl2溶液重悬各管细胞。 7. 为了长期保存,按每管250 μl的量分装于预冷的无菌聚丙烯管中,立即冻存于-70 °C。 8. 为检测感受态的效果,按照以下各步骤将10 ng pBR322转化到100 μl感受态细菌。 将合适体积的转化物(1、10和25 μl)涂于含有氨苄青霉素的LB平板上,37 °C培养过夜。 转化的大肠杆菌MC1061和DH1细胞一般可以产生105~108克隆数/μg DNA。 9. 将10 ng DNA (10~25 μl)加人到一个15 ml无菌的圆底试管中,并放置冰上。 10. 将盛有感受态细胞菌的管子握在手上使菌液迅速融化,立即将100 μl感受态细菌加入到管中,轻轻旋动,并放置冰上10 min。 11. 将管放人42°C水浴2 min进行热激,然后加人1 ml LB培养液于每一支试管中,于37 °C置滚筒式摇床(250 r/min)培养1 h。 12. 将几个稀释度菌液涂布于含合适抗生素的平板上,于37 °C培养12~16 h。 对氨苄青霉素来说,最适宜的密度是每个平板上的细胞≤500,这样是为了防止弱抗性的卫星菌落的生长。 13. 短期保存,可以将平板和剩下的含质粒的细菌培养物储存于4°C。长期保存则准备甘油或DMSO存储液,保存于-70°C。取出保存的细胞于选择性平板生长,用酶切检测质粒DNA 。
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