实验材料 pSV2-His带有靶基因开放阅读框的 pTet-Splice带有报道基因的 pTet-SpliqeNIH-3T3 细胞pPGKPuro可诱导表达自调控 tTA 的稳定细胞系
试剂、试剂盒 CaCl2小牛血清 氯喹HEPES 缓冲液磷酸缓冲液合适的限制性内切酶胰酶-EDTADMEM 完全培养液选择培养液蛋白样品缓冲液抗体Tris-甘氨酸 SDS-聚丙烯酰胺凝胶
仪器、耗材 塑料克隆环聚丙乙烯管组织培养皿组织培养板沸腾的水浴锅聚偏二氟乙烯膜
实验步骤
阶段 1:pTet-tTAK 稳定转染成纤维细胞
材料
缓冲液和溶液
贮存液稀释到适当浓度。
CaCl2(2mol/L)
溶液过滤除菌，然后以毎份 5 ml 分装，贮存在-20°C。
小牛血清（10%)
氯喹（10 mg/ml)
可选，请见步骤 7。
氯喹溶于水，溶液过滤除然后贮存在-20°C 。
10 mg/ml 氯喹相当于 19 mmol/L。请见第 16 章信息栏的二磷酸氯喹部分。
甘油（15%)HEPES 缓冲液稀释
HEPES 缓冲液
磷酸缓冲液
酶和缓冲液
合适的限制性内切酶
请见步骤 2。
1X 胰酶-EDTA
0.05% 胰酶
0.5 mmol/LEDTA(PH8.0)
培养液
DMEM 完全培养液（Dulbecco's modified Eagle's medium complete)
DMEM
100 单位/ml 靑霉素
100ug/ml 链霉素
2 mmol/L 谷氨酰胺
10% 供体小牛血淸
含有 0.5 吨/ml 四环素-HCl 的 DMEM 完全培养液
四环素-HCl 溶于 70% 乙醇，浓度 10 mg/ml, 贮存于-20°C。本方案中使用的含有 0.5ug/ml 四环素-HCl 的 DMEM 完全培养液 (含有或不含有选择性试剂）在 4°C 可以避光保存太约 1 个月。
含有 L-组氨醇（L-histidind) 和 0.5ug/ml 四环素的选择培养液
不含组氨酸的 DMEM
100 单位/ml 青霉素
100ug/ml 链霉素
2 mmol/L 谷氧酰胺
10% 供体小牛血清
125,250 或 500umol/L L-组氨醇（准备 125 mmol/L 贮液，在-20°C 贮存)
0.5ug/ml 四环素-HCl(溶于 70% 乙醇，浓度 10mg/ml, 在-20°C 贮存）
Irvine Scientific 公司（Santa Ana,California) 出售不含组氨酸的 DMEM。含有 0.5ug/ml 四环素-HCl 的选择培养液在 4°C 可以进光保存大约 1 个月。
特殊设备
塑料克隆环
克隆环竖放在一薄层真空脂上高压灭菌。
聚丙乙烯管（4 ml)
组织培养皿（6 cm 和10cm)
这些方案可以缩小规模，那样需要的细胞少，使用的培养皿和培养板部小一些，并且所有组分按比例减少。
附加试剂
步骤 23 需要列在第 7 章方案 8 或附录 8 中的试剂。
载体和菌株
pSV2-His
质粒都用 CaCl-溴化乙锭梯度平衡离心（第 1 章方案 10）或层析柱纯化（第 1 章方案 9）。
关于 pSV2-Hia 的信息，请见 Damke 等（1995)。质粒 pTet-tTAk 和 pTet-Splice 在 Life Technologies 公司有售，其他带有选择标记的载体也有出售（如 Promege 公司有 pCI-neo，CLONTECH 公司有 pTK.HYG)。如果以其他载体代替 pSV2-His，要用适合该质粒所带选择标记的选择培养液。
带有靶基因开放阅读框的 pTet-Splice
可选，请见步骤 2。
pTet-tTAk
细胞和组织
培养的哺乳动物细胞
本方案使用 NIH-3T3 细胞，但其他细胞当然也能用。细胞在合适的培养液中生长。
方法
培养和转染细胞
1. 在 DMEM 完全培养液中培养贴壁细胞。转染前一天，把细胞换到含有 0.5ug/ml 四环素-HCl(四环素）的 DMEM 完全培养液中。每个 10 cm 培养皿中加入足量细胞, 使转染那天，细胞可以有 33% 的汇合度。
重要：从这时起除非特别说明，细胞都在 37°C，5%CO2，含有 0.5ug/ml 四环素-HCl 的培养液中培养。
2. 在合适的限制性内切酶位点使质粒线性化，并把每种质粒的浓度调整为≥0.5 mg/ml。10~20ug 质粒 pTet-tTAk 和 1~2ug pSV2-His(Tet 质粒与带选择标记的质粒的摩尔比大约为 10:1) 与 500ul HEPES 缓冲液在一个干净的 4 ml 聚丙乙烯管中混合。
如果要共转染靶基因，那么带有靶基因的 pTet-Splice 重组体的加入量与 pTet-tTAk 的摩尔数相等。
3.DNA 混合物中加人 32.5ul 2mol/L CaCl2。立即轻轻振荡使溶液混匀。溶液在室温保存，不时地混匀。15~30 min 后会形成絮状沉淀。
用磷酸钙转染细胞的更详细内容请见第 16 章方案 2 和 3。
4. 吸掉步骤 1 准备的细胞培养皿中的所有培养液。
5. 用巴斯德吸管混合 CaCl2-DNA 若干次。滴加混合物，使它均匀地盖在单层细胞上。
6. 细胞在 37°C，5%CO2 条件下培养 30 min,15 min 后摇动培养皿，保证 DNA 沉淀物的均匀覆盖。
7. 每个细胞培养皿中加入 10 ml 含有四环素的 DMEM 完全培养液。细胞在 37°C，5%CO2 条件下培养 4~5 h。
如果细抱可以耐受，这时可以加入终浓度为 25umol/L 的不同类型细胞的最佳转染培养时间会有变化。
8. 轻轻吸掉培养液。避免破坏细胞上的沉淀物。
9. 加 2.5 ml 含 15% 甘油而且预热到 37°C 的 HEPES 缓冲液进行甘油休克。细胞在室温放置 2.5 min。甘油是滴加到培养液中。
甘油休克后，细胞看上去有些碎碎的是正常的。使用氯喹（步骤 7) 会进一步减低细胞的完整程度，但会提高转染效率。
10. 恰好在 2.5 min 的时候吸掉甘油溶液。操作得快一点，因为甘油对细胞毒性很大。
对于某些恢复能力强的细胞类型，为了优化转染效率，细胞在甘油溶液中的时间可以提高到 4~5 min。
作为一般规則，细胞休克的最长时间应该允许有大约 50% 的细胞存活。
11. 立即又轻又快地加入 10 ml 含有四环素的 DMEM 完全培养液洗细胞。立即吸掉培养液，再重复洗涤。
重要：因为甘油休充后，细胞很容易从培养皿上脱落下来，所以培养液都要在一个位置加。
12. 细胞中加入 10 ml 含有四环素的 DMEM 完全培养液，37°C 培养过夜。
13. 转染后大约 16~24 h, 吸掉培养液，换上 10 ml 含有四环素的 DMEM 完全培养液。
转染后一共在 37°C 培养 48 h(即步骤 12 和 13 的总培养时间）。
转染细胞的筛选和克隆
14. 转染后 48 h, 细胞用几种稀释度分到含有 125umol/L 组氨醇和 0.5ug/ml 四环素-HCl 的培养液中。细胞密度为每个 10 cm 培养皿大约 1X106 到 3X104。含有大约 1X105 细胞的培养皿需要培养若干个。
15. 细胞在选择培养液中培养 4 天后，接着用 3~4 ml 含有 125umol/L 组氨醇和 0.5ug/ml 四环素-HCl 的选择培养液培养。
16. 集落形成后（通常经过大约 10~12 天选择培养)，换成含有 250umol/L L-组氨醇和 0.5ug/ml 四环素-HCl 的选择培养液。
L-组氨醇通常对细胞有毒。所以只有当 pSV2-His 有高水平表达的细胞量达到曲界值，才能提髙选择培养液中 L-组氨醇浓度
17. 集落长好以后（选择培养 12~15 天)，在培养皿的底部用圆画出每个集落的边界。吸掉培养液，在培养皿的单个克隆上放置无菌的塑料克隆环。每个挑选的集落重复这个步骤。从培养皿中挑选细胞，要求单个集落隔得比较开，而且易于分辨。
重要: 用 pTet-tTAk 稳定转染后，为了防止 tTA 表达及随后筛选髙表达 tTA 的克隆时的毒性作用，细胞必须在含有 0.5ug/ml 四环素的培养液中培养。
18. 用大约 100ul 磷酸缓冲液很快地洗克隆。为了使细胞脱落，加 2 滴 1X 胰酶-EDTA(~100ul) 并放置 30~60s。用巴斯德吸管上下吹打使细胞变松。每个集落转移到 24 孔组织培养板的一个孔中，每个孔中有 1 ml 含 250umol/LL 组氨醇和四环素的选择培养液。
随后的细胞传代都用标准方法，如（1）PBS 快速洗涤；（2）1~3 min 胰酶-EDTA 消化（毎个铺满细胞的 10 cm 培养皿加 2 ml);（3）用含四环素的选择培养液或 10% 小牛血淸稀释/终止胰酶的活性。
19. 当孔中的细胞长到 80% 汇合度，把它们转移到 6 cm 组织培养皿中，用含有 500umol/L L-组氨醇和四环素的选择培养液培养。
NIH-3T3 细胞可以在大约 4~7 天生长到 80% 汇合度；但是不同细胞系甚至不同克隆生长到 80% 汇合度所需的时间是不同的。
20. 细胞在含有 500umol/L L-组氨醇和四环素的选择培养液中扩大培养（通常细胞进行 1:5 到 1:10 稀释）。
细胞进行蛋白诱导表达测试
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