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免疫血清制备方法(二)

2020.8.18
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

五、结果鉴定

 

以双相琼脂扩散试验测定所获免疫血清的抗体效价,并用琼指免疫电泳鉴定免疫血清中抗体的质量,应产生单一的沉淀弧线。鉴定方法的具体步骤参见有关部分。

 

六、材料

 

(一) 动物:健康成年家兔,雄性,体重2~3公斤。

 

(二) 器材:剪刀、镊子、注射器(2ml、50ml)附针头(9号、6号)、称量瓶(10ml)、量筒、动物固定架、灭菌三角烧瓶(200ml)、手术器械一套、血管夹、黑丝线、塑料放血管等。

 

(三) 试剂

 

1.灭菌生理盐水;

 

2.纯化人IgG(10mg/ml);

 

3.消毒酒精及碘酒;

 

4.羊毛脂;

 

5.石蜡油;

 

6.活卡价苗(BCG)(75mg/ml);

 

7.弗氏不完全佐剂(FIA)制备:称羊毛脂10克,逐滴加入优质石蜡油40ml,边滴边研磨,分装于疫苗瓶中(每瓶10ml),高压灭菌(8磅20分钟)后保存备用。

 

8.弗氏完全佐剂乳化抗原(FCA-IgG)的制备:将FIA予温(60℃30分钟),吸取3ml于研钵中,逐滴加入活BCG(75mg/ml)0.5ml及纯化人IgG2.5ml(2.4mg/ml)牨_滴入边研磨直至形成均一性的乳状液,取1滴滴于冷水面上不散开为合格。

 

七、注意事项

 

1.免疫用实验动物的抗体反应性个体差异性较大,因此免疫时至少应选用两只以上动物。另外,不能使用妊娠动物。

 

2.免疫用的抗原必须经FCA或FIA充分乳化后才能注射,否则将明显影响抗原的免疫效果。上述制备乳化抗原的方法较费时、费力。采用H-81微型振荡混合器法或三腔管研磨法制备。前者是将抗原液与佐剂按比例混合后,置于混合器上使之剧烈振荡(频率2900转/分,振幅6mm);后者是将免疫用的佐剂和抗原液按比例混合后,吸入注射器内再将注射器连接于三腔管上反复抽吸研磨。这两种方法约1小时即可使抗原充分乳化。

 

3.佐剂一方面可提高特异性免疫反应的效果获得高效价的免疫血清,但若抗原不纯时,可使抗原中极微量的污染物(0.005mgN)产生抗体,以致导致免疫血清的纯度受到影响。另外,有些实验动物种系对BCG过敏,尤其是豚鼠其次是家兔,当再次注射完全佐剂时,可以引起变态反应而导致免疫失败。为此,第二次免疫注射时应减少佐剂中BCG的含量或改用不完全佐剂,以减少和防止变态反应的发生。

 

4.抗原的剂量决定于抗原的种类。对免疫原性强的抗原剂量应相别较少,免疫原性弱的抗原剂量可相对较多。抗原的用量一般以体重计算。在使用佐剂的情况下,一次注入的总剂量以0.5mg/kg体重为宜。如不加佐剂时剂量可加大10倍。另外,免疫周期长者可少量多次注射,免疫周期短者可较大量少次注射。

 

5.免疫方法上也可采用多点注射法免疫动物。即于家兔脊柱两旁选4-6点皮下注射,同时于两侧肩部(或臂部)和鼠蹊部各注一处。每点注0.2ml,间隔2周后再于上述部位选不同点同上注射,也可产生高效价的免疫血清。


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