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淀粉酶的固态发酵实验

2020.8.18
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

实验方法原理 淀粉酶有催化淀粉水解的作用,能从淀粉分子非还原性末端开始,分解a-1,4-葡萄糖苷键生成葡萄糖。在碱性条件下,还原糖与3,5-二硝基水杨酸共热,3,5-二硝基水杨酸被还原为3-氨基-5-硝基水杨酸(棕红色物质),还原糖则被氧化成糖酸及其它物质。在一定范围内,还原糖的量与棕红色物质颜色深浅的程度呈一定的比例关系,可在722型分光光度计540 nm波长测定棕红色物质的吸光度值。查标准曲线计算,可求出发酵液中还原糖的含量,从而求出淀粉酶活力。

实验材料 麸皮面粉

试剂、试剂盒 NaNO3 KH2PO4(NH4)2SO4CaCl2MgSO4·7H2OCoCl2FeSO4·7H2OZnSO4

仪器、耗材 分光光度计恒温水浴锅生化培养箱磁力搅拌器三角瓶

实验步骤

一、实验主要仪器设备和材料

 

分光光度计、恒温水浴锅、生化培养箱、磁力搅拌器、三角瓶、麸皮、面粉、NaNO3 、KH2PO4、(NH4)2SO4、CaCl2、MgSO4.7H2O、CoCl2、FeSO4·7H2O、ZnSO4。

 

二、实验方法、操作步骤

 

1.  还原糖的测定

 

(1)标准曲线的制作

 

取9支干燥试管编号,按表1所示的量,精确浓度为1.00 mg/ml的葡萄糖标准液和3,5-二硝基水杨酸试剂。表中单位为ml。  


将各管摇匀,盖上小漏斗,在沸水浴中加热5 min,立即用冷水冷却至室温,再向各管中加入蒸馏水至 20.5 ml,用橡皮塞塞住管口,混匀。切勿用力振摇,以免引入气泡。在540 nm波长下,以0号管为空白,在分光光度计上测定1-8号管的吸光度值。以吸光度值为纵坐标,葡萄糖毫克数为横坐标,绘制标准曲线。 


(2)发酵液中残留还原糖的测定

 

发酵液单层滤纸过滤,滤液0.2 ml定容至100 ml,500倍稀释至含糖量2-8 mg/100 ml为试样。

 

取4支干燥试管,编号,按表2所示的量,精确加入待测液和试剂(ml)

 

试剂加入后,其余操作步骤与制作葡萄糖标准曲线时的相同,测定出各管溶液的吸光度值。

 

计算

 

以管1、2、3的吸光度值的平均值在标准曲线上查出相应的还原糖毫克数,按下式计算样品中还原糖的百分含量: 


2.  氨基态氮的测定

 

(1)取发酵滤液5.00 ml,置于100 ml烧杯中,加入15 ml水,磁力搅拌器搅拌5 min后,将电位计插入烧杯中,用0.1 mol/L NaOH标准溶液滴定至酸度计指示pH=8.20,此为游离酸度,不予计量。加入10.0 ml甲醛溶液,立即混匀,迅速用0.1 mol/L NaOH标准溶

液滴定至酸度计指示pH=9.20,计下消耗NaOH标准溶液的毫升数。同时用水做空白实验。

 

(2)计算

 

氨基氮(%)=(V-V0)×N×0.014×20/5×100

 

式中: V--加甲醛后试液消耗氢氧化钠体积,ml;

 

V0--加甲醛后空白液消耗氢氧化钠体积,ml;

 

M-- NaOH标准溶液的浓度,mol/L;

 

0.014--与1.00 ml NaOH标准溶液相当的氮的质量,g;

 

(3)淀粉酶活力的测定及计算

 

淀粉酶活力(IU/g干培养基):本实验条件下,每分钟释放出1umol还原糖所需要的酶量称为一个酶活力单位。

 

(4)总体实验操作流程:

 

①配制培养基,灭菌,冷却。

 

②冷却后接种,并搅拌均匀,置于28 ℃培养箱进行培养。

 

③每隔24 h取样,用0.2 M 磷酸氢二钠和磷酸二氢钠缓冲液(pH6.0)按一定的浸提比进行浸提1 h,离心得粗酶液。共取样6次。

 

④分别测定酶液中淀粉酶活力、还原糖和蛋白质含量。

 

三、实验结果

 

1.  以还原糖浓度为纵坐标,培养时间为横坐标,绘出不同时间还原糖的变化曲线。

 

2.  以氨基态氮浓度为纵坐标,培养时间为横坐标,绘出不同时间氨基态氮的变化曲线。

 

3.  以淀粉酶活力为纵坐标,培养时间为横坐标,绘出不同时间淀粉酶活力的变化曲线。


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