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试管法抗补体试验

2020.9.21
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

实验概要

抗补体试验是根据血清中存在的免疫复合物能结合C1的特性,将已知量的豚鼠补体先与经56℃灭活补体的被检血清一起温育,然后加入致敏红细胞,观察其溶血程度,如果被检血清中含有免疫复合物就能消耗补体,致使致敏红细胞的溶血程度明显减弱。抗补体试验很敏感,可测得0.1~0.5ng/ml的免疫复合物。

主要试剂

pH值74巴比妥缓冲液(有钙、镁和无钙、镁两种)。

主要设备

72型分光光度计、电热恒温水浴箱(37~65℃)、离心机等。

实验材料

1. 绵羊红细胞新鲜羊血液脱纤,与抗凝保存液混匀后,分装于10ml玻璃试管,置4℃冰箱内保存,可达3周左右。

2. 溶血素以绵羊红细胞免疫家兔后,所获得的兔抗羊红细胞免疫血清。

3. 豚鼠补体取4~5只豚鼠,心脏采血,每只4~5ml,分离血清,混合后分装安瓿瓶,冷冻干燥保存。

实验步骤

1. 2%致敏绵羊红细胞的制备

4%绵羊红细胞:将抗凝保存的绵羊红细胞以10倍于压积绵羊红细胞容积的生理盐水洗涤2次,每次2500 r/min离心5min,第3次以pH值7.4巴比妥缓冲液应用液(不含钙、镁)洗涤,以后尽可能的吸去上清液,以压积红细胞制备4%绵羊红细胞悬液。为了使红细胞悬液标准化,取0.1ml 4%绵羊红细胞悬液加入5ml、pH值7.4巴比妥缓冲液应用液(不含钙、镁),以72型分光光度计读数(波长542nm,1cm比色杯),透光率应为40%,否则应予以调节。也可采用半溶管光密度数作调节,即将0.5ml 4%绵羊红细胞悬液加入95ml蒸馏水,于72型分光光度计读数(波长542nm,05cm比杯色),光密度数应为0.20左右。

2. 单位溶血素

   1) 将已知效价的溶血素用pH值7.4巴比妥缓冲液(不含钙、镁)稀释为2单位。将4%绵羊红细胞悬液与2单位溶血素等量混合,即为2%致敏绵羊红细胞。

   2) 2单位豚鼠补体的配制

将低温保存已知效价的豚鼠血清用pH值7.4巴比妥缓冲液(不含钙、镁)稀释为2单位,及与其相邻近值的2管,共3管。如豚鼠补体效价为100单位/ml,可分别作1∶50(2单位)、1∶40及1∶60稀释,分别取0.3ml,然后依次操作:

      a. 加入0.3ml pH值7.4巴比妥缓冲液(不含钙、镁),4℃ 60min;

      b. 加入0.3ml 2%致敏绵羊红细胞悬液,37℃作用15min;

      c. 再加入3ml同样缓冲液,混匀后,2500 r/min离心5min,取上清液以72型分光光度计读数(波长542nm,比色杯05cm),选择光密度在0.1~0.13管为最适宜豚鼠补体稀释倍数。

   3) 测定:

      a. 取0.15ml待检血清,56℃灭活60min;

      b. 加入0.15ml pH值7.4巴比妥缓冲液(不含钙、镁)及0.3ml豚鼠血清(2单位左右),4℃ 60min,使之充分作用;

      c. 加入0.3ml 2%致敏绵羊红细胞,37℃ 15min;

      d. 加入3ml同样缓冲液,混匀后,2 500 r/min离心15min,取上清液以72型分光光度计读数。每次测定须设有阳性、阴性血清对照及空白对照(以0.15ml缓冲液替代血清)。测定管光密度数低于空白管对照50%以下者判为阳性。


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