| 导EB形成 1-2h 1. 当ESCs/iPSCs在六孔板中长到融合度为70-80%时用于诱导EB，通常每个六孔板孔的细胞可用于诱导一整个96孔板。 注：干细胞克隆的形态对于大脑组织形成的成功与否非常关键。克隆需呈现多能性的特征 (如边缘清晰，克隆紧密等)，且无分化倾向； 对于无饲养层培养的ESCs/iPSCs： ① 用1ml的无钙镁的D-PBS洗涤细胞后，向每孔中加入600μl的含0.5mM的EDTA的无钙镁的D-PBS溶液。培养箱孵育4min； ② 轻柔吸出EDTA溶液，注意不要破坏克隆，加入1ml的Accutase。放回培养箱孵育4min； ③ 用1ml的mTeSR1培养基吹散克隆，使其从培养皿底部脱落。转移2ml至15ml离心管中，用1ml移液器将克隆吹散为浑浊的单细胞悬液； ④ 270g 室温离心细胞5min，同时用台盼蓝检测死细胞，用血细胞仪或自动细胞计数仪细胞计数；检测两次取平均值； ⑤ 用1ml的含50μM的ROCK抑制剂Y-27632的低bFGF的ESCs培养基重悬细胞，吹打，保证细胞呈单细胞重悬的状态。然后，用含Y-7632的低FGF-2的培养基重悬细胞，使细胞浓度为每150μl含9000个活细胞； ⑥ 每个96孔板孔中放入150μl的细胞悬液，置于培养箱继续培养； 饲养EB,早期胚层分化 5-7d 2. 24h后，显微镜下观察,可见有清晰边缘的小的EB形成,边缘有许多死细胞围绕在EB周围,为正常现象，不会干扰EB在中间形成,继续置于37℃的5%二氧化碳的培养箱中培养； 3. 隔天轻柔地吸去半量培养基,避免干扰到EB和底部的细胞,补充150μl的新鲜培养基(总体积会大于150μl,量的准确与否不重),培养基中添加Y-27632(1:100),FGF-2浓度为4ng/ml,直到EB直径大于350-450μm为止,通常,仅前4天需要添加二者； 4. EB直径达到350-600μm时，用3中的培养基隔天饲养EB,培养基中不含Y-27632和FGF-2； 原始神经上皮的诱导 4-5d 5. EB直径达到500-600μm时，边缘开始变得明亮，并且呈现光滑的边缘 (通常为第6天)，将每个EB用剪掉枪头的200μl移液器转移至含有500μl的神经诱导培养基的低吸附24孔板中，轻柔且不要破坏EB，继续培养； 注：将200μl移液器枪头剪掉，使开口直径约为1-1.5mm。确保开口不要太小，避免破坏EB，但也不能太大，太大会难以吸去EB。不要试图用刮刀将EB铲出，会破坏EB的结构； 6. 转移至24孔板后，另外加入500μl的神经诱导培养基饲养EB； 7. 2d后，组织培养显微镜观察EBs，形态边缘变得更加明亮，提示神经外胚层的分化；一旦这些区域开始显示与神经上皮形成一致的假复层上皮的放射状组织，这一般发生在神经诱导培养基中的4-5d后，继续进行第8步，将组织聚集转移到Matrigel液滴中； 注：健康的细胞聚集有光滑的边缘，神经上皮边缘在光学上呈半透明状。有时组织可能在光学上表现为非放射状组织的半透明组织，虽然这不是理想状态，但没有观察到这对类器官形成有长期的负面影响。重要的是，如果在神经诱导中再多放置1-2天，这些非放射区域就会变成放射状，但是如果不及时转移到基质凝胶(步骤8)，其他已经放射状的区域可能开始收缩并失去形成神经上皮芽的能力。当有神经外胚层出现时，需尽快将组织转移到Matrigel中，如果太晚，会影响脑组织的晚期形态； 将神经外胚层组织转移至Matrigel液滴中 1-2h 8. 4℃下冰上解冻Matrigel。观察发现，500μl的Matrigel在冰水混合物浴时，1-2h后会恢复液体状态； 9. 将Parafilm膜置于一个空的带有凹坑的中号枪头盒上，将手指按向Parafilm膜形成凹坑，每个坑的体积约为200μl； 注：Parafilm不能高压灭菌，所以不能彻底灭菌，因此需保证Parafilm膜保存在干净的环境中，准备凹坑前，向手套和Parafilm膜喷洒70%乙醇消毒；在这一步也可以在培养基中添加抗生素以避免污染； 10. 将Parafilm膜用剪刀修剪为单个含4x4(共16个)凹坑大小的正方形，将其放入60mm的组织培养皿中； 11. 用200μl的移液器转移神经外胚层组织，每个凹坑中放置1个； 注：将200μl移液器枪头剪掉，使开口直径约为1.5-2mm。确保开口不要太小，避免破坏EB，但也不能太大，太大会难以吸去EB。不要试图用刮刀将EB铲出，会破坏EB的结构； 12. 用未剪头部的200μl移液器小心地吸去组织边缘多余的培养基； 13. 每个组织快速滴入Matrigel，每孔约30μl，使Matrigel滴入Parafilm凹坑中； 注：快速滴入Matrigel，避免组织干掉。尽量一次性滴入Matrigel，一次性包埋好16个组织； 14. 用10μl的移液枪头移动组织，使组织位于液滴的中央，这一步需要在滴入Matrigel后立即进行，因为室温下Matrigel非常容易固化； 15. 将此60mm培养皿置入37℃培养箱中，孵育20-30min以使Matrigel聚合； 16. 取出60mm培养皿，加入5ml不含Vitamin A的脑类器官分化培养基； 17.将Parafilm膜反过来并摇动培养皿，直至Matrigel液滴从凹坑中滴入培养基中；不容易脱落的液滴可以用镊子用力晃动Parafilm膜使其脱落，将培养皿置于培养箱中继续培养组织。 神经上皮芽的固定培养 4d 18. 24h后，观察包埋的组织，1-3d内，组织会呈现包含液体空腔的进一步扩张的神经上皮样； 注：从Matrigel主体中会迁移出一些细胞类型，通常呈成纤维细胞样，这些细胞代表了非神经特性的群体，从神经诱导时逃脱出来；然而这些细胞通常不能生存，且迁移出来后，对神经上皮芽的形成呈现促进作用； 19. 将液滴继续培养24h，然后将培养基更换为不含Vitamin A的脑类器官分化培养基，继续培养48h； 注：换液时，倾斜培养皿使液滴下沉，轻柔吸出培养液。尽量在不破坏类器官的情况下，吸出更多的培养液。更换为5ml的新鲜培养液； 脑组织的生长 ~1年 20. 4h的静止培养后，用开口约为3mm的剪去头部的1ml移液枪头将包埋好的类器官转移至125ml的震动反应器中，加入75~100ml的含Vitamin A的脑类器官分化培养液，将此生物反应器放置在培养箱中安装的磁搅拌板或轨道振动筛上用85rpm的速度震动。也可以将60mm的培养皿中培养液更换为含Vitamin A的脑类器官培养液，将其置于轨道振动筛上培养； 注：每个生物反应器中不要转移超过2个60mm培养皿的类器官(32个)，太多类器官会引起类器官的融合； 使用低速搅拌搅拌板，因为常规速度的搅拌棒会因磁力搅拌而引起发热； 轨道振动筛可用于分析多种培养条件，同时使用多种基因突变剂处理，而传统的搅拌板只能同时防止4-6个单独的瓶；用生物反应器和轨道振动筛培养的脑类器官未观测到有区别； 21. 振动筛上的类器官每3-4天全量换液，摇瓶上的类器官每周换液，注意观察形态；在合适的时间点取样本用于实验研究； |
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| PeproTech提供人脑类器官培养所需的各种细胞因子及小分子，并提供人ESC/iPSCs培养所需的培养基及培养器皿包被基质，产品详情如下表： |
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| 04 |参考文献 |
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1.Chhibber T et al.(2020). CNS organoids: an innovative tool for neurological disease modeling and drug neurotoxicity screening. Drug Discov Today Feb;25(2):456-465. 2.Lancaster, M.A. et al. (2013) Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature 501, 373-379 3.Lancaster, M.A. and Knoblich, J.A. (2014) Generation of cerebral organoids from human pluripotent stem cells. Nat. Protoc. 9, 2329-2340. |
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