科学家们利用染色质对DNase消化和Tn5转座的敏感性，对基因组的调控序列进行定位和解读。
近来越来越多的证据显示，许多遗传学差异并非直接影响基因，而是改变控制基因开/关的调控序列。近期Nature Methods杂志上发表了三篇文章，介绍了在基因组中定位调控序列的新技术，阐述了进行数据分析时面临的主要问题。
活化的调控序列上结合有转录因子，转录因子是识别特定DNA序列的蛋白。一旦转录因子结合，就会招募其他蛋白，使附近的基因开始转录。在指定细胞中鉴定所有活跃的调控序列，对于理解基因组的作用机制非常重要。
常用的染色质免疫沉淀法，直接检测与转录因子结合的DNA序列。这种方法一次只能提供一个转录因子的信息，而细胞中可能有数百个转录因子处于活跃状态。
染色质由一系列盘绕着DNA的核小体组成。转录因子与基因组结合时，取代了核小体的位置，暴露出DNA，使其对酶的切割更为敏感。在此基础上，人们可以利用染色质对DNase的敏感性，鉴定活化的调控序列。
DNase-seq方案包括，用DNase I优先切割核小体被取代的DNA序列。对生成的短片段进行测序，并将其定位到基因组上，以鉴定对酶敏感的“染色质打开”区域。一些转录因子的结合位点，显示出高度特异性的DNase I剪切模式。这种“DNase足迹”，常被用于检测特定转录因子的结合。
Vierstra等人对DNase-seq方法进行了扩展，提出了称为DNase-FLASH的方案(Nase I–released fragment-length analysis of hypersensitivity)。他们对DNase切割后的DNA片段进行了两端测序，在基因组中定位这些片段的末端，可以反映片段的长度。研究显示，当两次DNase切割发生在核小体之间的区域时，生成≤200bp的短片段。当DNase切割跨越一个核小体时，生成约200–500bp的长片段。这一方法可以帮助人们鉴定，调控序列及其旁边的核小体。
Buenrostro等人提出了ATAC-seq法(ssay for transposase-accessible chromatin using sequencing)，通过Tn5转座酶，优先标记和测序核小体之间的DNA。ATAC-seq提供的信息与新DNase-seq法差不多，但步骤更为简单，需要的细胞也更少。在无法获得大量细胞的情况下，ATAC-seq更有帮助。例如，可以在癌症组织或iPS生成的细胞中，用ATAC-seq检测调控序列。此外，ATAC-seq也有望成为有用的诊断工具。
He等人也对DNase-seq片段进行了双端测序，他们主要考量DNase I浓度和片段大小对结果的影响。同样他们也发现，短片段主要源自于核小体之间的区域，而长片段跨越了核小体。研究指出，短片段对鉴定转录因子的结合更有用，长片段可以提供核小体的间隔信息。
研究显示，DNase I和Tn5的切割偏好，已经成为鉴定转录因子结合的一大挑战。研究人员使用无核小体和转录因子的“裸”DNA，展现了DNase I切割的强烈偏好。他们指出，之前许多DNase印记分析，反映得更多的是切割偏好，而不是转录因子的真实结合情况。
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