例7 鼠肝主质细胞的多倍体级浮选分离 l 设备及样品：同例（5） l 转速1350rpm（～210g） l 温度4℃ l 初始充样流速12ml/min，直至细胞充满离心室 l 分别用流速19，32，41（ml/min）收集I,II,III 细胞，收集量分别为100ml，150ml 及100ml l 已收集细胞储存于4℃ l 停止输液后转头停转，从离心室收集沉淀并收集混合室样品 l 用低速低温离心机甩平转头分别将收集液离心沉淀，1000×g，10 分钟，将沉淀与3ml 浮选介质混合制成倍体细胞悬液，4℃保存。 l 结果：细胞数量与活性分析
| 成分 | 流量ml/min | 细胞数量×106 | 活性（％） | 组成 |
| 原液 | 137.8 | 84 | 2n，4n，8n，16n 及少量细胞聚集团及细胞碎片 | |
| I | 19 | 39.8 | 72 | 2n，4n, 少量细胞碎片 |
| II | 32 | 54.7 | 85 | 4n（90％） |
| III | 41 | 15.5 | 83 | 4n，8n，细胞聚集团 |
| 沉淀 | 17.1 | 82 | 同原液数据 | |
| 混合室 | 5.2 | 85 | 同原液数据 | |
| 总数 | 127.0（92％） |
例8 肝的Kupffer （星形细胞）及endothelial( 内皮)细胞纯化 l 浮选设备：同上述例 l 浮选用介质：GBSS l 各种染色介质（参考各节） l 肝窦状细胞（Sinusoidal）悬液 l 分离步骤
| i. | 用不连续Nycodenz 梯度制备鼠肝Sinusoidal 细胞悬液（参见本文前例） |
| ii. | 安装离心浮选系统（Hitachi 或Beckman） |
| iii. | 标准离心室：3,250rpm，4℃ |
| iv. | 初始流量13.5ml/min 注入1～5×108个细胞悬液 |
| v. | 在流量分别为18，32，48ml/min 时分别收集100ml，150ml，150ml |
| 收集液中含有白细胞（L）、星形细胞（K）、内皮细胞（E）及主质细胞（P），收集 | |
| 液保存在4℃。 | |
| vi. | 离心后收集在浮选室中的细胞 |
| vii. | 各种收集液离心沉淀：450g×10 分，沉淀分别混悬于3mlGBSS 中 |
viii. 结果如下表：
| 成份 | 细胞主要类型 | 细胞总量×106 | 活性 | 染色细胞比例％ | 组成％ | ||||
| ％ | P1 | E1 | P | L | E | K | |||
| 初始细胞液 | Sinusoidal | 167.4 | 87 | 24.7 | 86.8 | 0.6 | 13.2 | 61.5 | 24.7 |
| I 收集液（100ml） | L | 19.9 | 80 | 3.0 | 28.6 | / | 71.4 | 25.6 | 3 |
| II 收集液（150ml） | E | 82.5 | 95 | 9.0 | 89.2 | / | 10.8 | 80.2 | 9 |
| III 收集液（150ml） | K | 34.7 | 97 | 83.5 | 95.1 | / | 4.9 | 11.6 | 83.5 |
| 沉淀 | 细胞聚集团 | 9.8 | 95 | 34.5 | 96 | 16.0 | 4.0 | 44.6 | 35.4 |
注： l 表成染色比例中 P1：Peroxidase 过氧化物，E1：Esterrase（酯酶） l Sinusoidal 细胞制备方法参见前述内容。 例9 鼠肝储脂细胞的离心浮选纯化（文献14）
| i. | 离心浮选设备（同上） |
| ii. | 转速3,250rpm，4℃，流量16ml/min |
| iii. | Sinusoidal 细胞制备参照前述二阶不连续梯度离心法。 |
| iv. | 加样：5～50×107 个细胞注入混合室 |
| v. | 用16ml/min 及18ml/min 分别收集二次，最后收集在离心室中剩下的细胞液 |
| vi. | 以上三种收集液分别450g×10 分钟离心，收集沉淀后分别用2mlGBSS 混成 |
| 悬液 |
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