共找到 155 条与 相关的标准,共 11 页
本文件规定了膏方生产的术语和定义、技术要求、试验方法、检验规则、包装、运输和贮存。 本文件适用于膏方的设计、生产、检验和使用。
Technical Specifications for Paste Prescription Production
本文件描述了重组胶原蛋白细胞黏附活性评价的整合素结合法和整合素下游激酶信号激活水平检测法。
Methods for the evaluation of cell adhesion induced by recombinant humanized collagen
本文件适用于重组人源化胶原蛋白生产过程中内毒素的去除。
Methods for the endotoxin removal of recombinant humanized collagen
本文件规定了一次性使用卫生用品中绿脓杆菌的实时荧光PCR检测方法。 本文件适用于一次性使用卫生用品中绿脓杆菌的定性检测。
Detection of Pseudomonas aeruginosa in disposable sanitary products Real-time fluorescence PCR method
本文件规定了一次性使用卫生用品中环氧乙烷含量的气相色谱-质谱法检测方法。 本文件适用于检测一次性使用卫生用品中环氧乙烷含量的气相色谱-质谱法。
Determination of ethylene oxide residues in disposable sanitary products Gas chromatography-mass spectrometry
本文件规定了一次性使用卫生用品中溶血性链球菌的实时荧光PCR检测方法。 本文件适用于一次性使用卫生用品中溶血性链球菌的定性检测。
Testing of hemolytic streptococci in disposable sanitary products by real-time fluorescence PCR method
本文件给出了泊沙康唑中间体的合成方法、合成过程以及检验方法。
Technical specifications for intermediate preparation process of posaconazole
本文件规定了鲜奶源鉴别检测试剂盒的术语和定义、生产、性能指标、试验方法、样本要求、操作程序、注意事项、标识、标签和使用说明书、包装、运输和贮存相关内容。 本文件适用于鲜奶样本的奶源性检测。
Technical requirements for fresh milk source identification test kits
本文件规定了动物组织鉴别检测试剂盒的术语和定义、生产、性能指标、试验方法、样本要求、操作程序、注意事项、标识、标签和使用说明书、包装、运输和贮存相关内容。 本文件适用于动物组织、组织液等样本的动物源性检测。
Technical requirements for animal tissue identification test kits
本文件规定了消毒抑菌功能性液体膜(以下简称“产品”)的原料、技术要求、试验方法、检验规则、标志、包装、运输、贮存和保质期。 本文件适用于消毒抑菌功能性液体膜的生产、检验。
Disinfection and antibacterial functional liquid membrane
本文件规定了灸用艾绒的产品分类与使用、技术要求、试验方法、检验规则、标志、标签、包装、 运输和储存。 本文件适用于干燥后的艾叶经加工制成的各种艾绒产品。
Moxa Rong
本文件规定了雷火灸柱的术语和定义、技术要求、试验方法、检验规则、标志、包装、运输及贮存 等。 本文件适用于雷火灸柱。
Thunder fire moxibustion column
4 配方要求 4.1 配方应明确原料出处,在《中华人民共和国药典》中没有记载的应提供正式出版物证明材料。 4.2 一次投料、同一班组、同一生产线的同一规格为一组批产品。 4.3 配方应明确原料、辅料的名称及用量。 4.4 原料、辅料在配方之前有特殊加工的,应标注加工方法。 4.5 辅助材料应符合 FZT64005-2021 卫生用薄型非织造布规定的要求。 5 生产工艺 5.1 描述重点工艺过程,包括原料、辅料的加工方法和填充物细度制备过程、技术参数、包裹方法及分装情况。 5.2 应有膏贴剂产品规格的描述。 5.3 应描述药剂底衬基质的用材性质。 6 性状 描述产品外观,无肉眼可见污物色斑、特有中药特殊气味、布包软硬度、形态及尺寸、色泽等。 7 鉴别 凡由3味以上配料制成的膏贴类保健用品,选取至少1味主要原料进行薄层色谱鉴别,3味以下无需鉴别。 8 卫生指标 8.1 外观 按生产工艺加工好的底衬基质放在干净明亮的平台上,应色泽均匀软硬适中,包裹缝合平整、无渗漏。 8.2 感官指标 感官指标应符合表1的规定。 表 1 项目 指标 气味 中药气味 装量差异 不得少于标示量 理化指标 符合微生物指标 细度(目筛) 80目过筛率≥ 80.0% 8.3 微生物指标 微生物指标应符合表2的规定。 表 2 项目 限值 备注 菌落总数(CFU/g 或 CFU/mL) ≤500 眼部化妆品、口唇化妆品和儿童化妆品 ≤1000 其他化妆品 霉菌和酵母菌总数(CFU/g 或 CFU/mL) ≤100 耐热大肠菌群/g (或mL) 不得检出 金黄色葡萄球菌/g (或mL) 不得检出 铜绿假单胞菌/g (或mL) 不得检出 8.4 理化指标 理化指标应符合表3的规定。 表 3 项目 指标 持粘性,mm(含胶膏贴类) ≤2.5 剥离强度,N/cm(含胶膏贴类) ≥1.0 升温时间,min(自发热膏贴类) ≤20 温度持续时间,h(自发热膏贴类) ≥6 最高温度, ℃(自发热膏贴类) ≤60 汞(以 Hg 计),mg/kg ≤1 砷(以 As 计),mg/kg ≤2 铅(以 pb 计),mg/kg ≤5 镉(以 cd 计),mg/kg (黑膏药不检) ≤10 8.5 装量差异 取供试品,分别称定每个布包内容物重量,内容物10g以下(含10g) 取10包/个,10g以上至20g(含20g)取5包/个,20g以上取3包/个,分别称定每包内容物的重量,均不得少于标示量。 8.6 安全性 按《化妆品安全技术规范(2015年版)》的方法进行,应无毒、无害、无刺鼻感,对皮肤无明显刺激性及不良反应。
Technical Code for Production of Paste Healthcare Products
4 配方要求 4.1 配方应明确原料出处,原辅料应符合《中华人民共和国药典》2020年版一部、二部、四部的有关规定。《药典》中未收载的原辅料应符合国家标准或行业标准、地方标准等的规定。对于那些没有相应标准的原辅料,必须提供官方出版的文献资料或者能够提供详尽的描述。严禁使用受国家保护的动植物作为原辅料物。 4.2 一次投料、同一班组、同一生产线的同一规格为一组批产品。配方应明确原料、辅料的名称及用量,应以最小值1000mL(g)计算。 4.3 原料、辅料在配方之前有特殊加工的,应标注加工方法。 4.4 应标注辅助材料(如乙醇、水、油、醋等)的性质、名称。 5 生产工艺 重点描述制备过程,工艺参数,包装材料的名称及性质,分装规格。 6 产品属性 应描述内容物的外观、气味等。 7 鉴别 7.1 显微鉴别:产品中含有饮片粉末的应做显微鉴别。 7.2 薄层色谱鉴别:凡由4味以上配料制成的产品,应选取至少2味进行薄层色谱鉴别。4味药以下的产品,不需要进行薄层色谱鉴别。 7.3 含有贵细中药必须进行薄层色谱鉴别。贵细中药材部分目录参见 T/HENANPA 009-2022《贵细中药饮片推荐目录及管理策略》 8 技术指标 8.1 感官 感官应符合表2的规定。 表 2 项目 要求 外观 形态为膏体、液体、油状液体,色泽一致无斑点,无明显肉眼可见外来杂质、液体久置后允许有少量沉淀 气味 中药混合气味、无酸败异臭 8.2 理化指标 理化指标应符合表3的规定。 表 3 项目 指标 汞(以Hg计),mg/kg ≤1 砷(以As计),mg/kg ≤2 铅(以Pb计),mg/kg ≤5 镉(以Cd计),mg/kg ≤10 8.3 微生物指标 微生物指标除特殊规定外应符合表4的规定。 表 4 项目 指标 菌落总数(CFU/g或CFU/mL) ≤500 耐热大肠菌群/g(或mL) 不得检出 金黄色葡萄球菌/g(或mL) 不得检出 铜绿假单胞菌/g(或mL) 不得检出 霉菌和酵母菌总数(CFU/g或CFU/mL) ≤100 8.4 装量差异 装量差异应根据产品规格进行测定,根据批量选择合适取样量。 测量体积时开启应注意避免损失,将内容物分别倒入预经标准化的干燥量筒中,黏稠液体倒出液体后,将容器倒置15分钟以上沥净。读出每个容器内容物的装量,均不得低于标示量。
Technical Code for Production of Healthcare Products for Wiping
4 技术要求 4.1 原辅料 原辅料应当遵循《中华人民共和国药典》2020年版第一、第二和第四部分的相关规定。《中华人民共和国药典》2020年版未涵盖的原辅料则应符合现行的国家标准、行业标准、地方标准等的规定。对于那些没有相应标准的原辅料,必须提供官方出版的文献资料或者能够提供详尽的描述。严禁使用受国家保护的动植物作为原辅料物。 4.2 鉴别 常用粉状类保健用品至少选取一种主要原料进行显微鉴别。 4.3 感官 感官应符合表1的规定。 表 1 项目 指标 形态 粉状或绒状 色泽 根据产品描述色泽 气味 根据产品描述气味 杂质 无明显肉眼可见外来杂质 细度(筛目) 应有的筛目 4.4 微生物指标 微生物指标应符合表2的规定。 表 2 项目 要求 菌落总数(CFU/g 或 CFU/mL) ≤1000 耐热大肠菌群/g (或mL) 不得检出 金黄色葡萄球菌/g (或mL) 不得检出 铜绿假单胞菌/g (或mL) 不得检出 霉菌和酵母菌总数(CFU/g 或 CFU/mL) ≤100 4.5 理化指标 理化指标应符合表3的规定。 表 3 项目 单位 指标 升温时间(自发热类) min ≤20 温度持续时间(自发热类) h ≥0.5 最高温度(自发热类) ℃ ≤60 汞 (以Hg计 ) mg/ kg ≤1 砷(以As计) mg/ kg ≤2 铅(以pb计) mg/ kg ≤10 镉(以cd计),(黑膏药不检) mg/ kg ≤5 4.6 安全性 无毒、无害、对皮肤无刺激性。 4.7 净含量及允许短缺量 产品的规格应根据市场需求来设定,同时,所允许的短缺量必须遵守《定量包装商品计量监督管理办法》中的相关规定。 5 试验方法 5.1 感官 取产品适量置于白色瓷盘中,在室内自然光线下观察形态、色泽、杂质、细度,嗅其味道。 5.2 理化指标 5.2.1 升温时间、温度持续时间、最高温度 按照中华人民共和国医药行业标准《YY 0060-2018 热敷贴(袋)》规定的方法进行。 5.2.2 汞、砷、镉、铅 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3 微生物指标 5.3.1 菌落总数 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.2 耐热大肠菌群 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.3 金黄色葡萄球菌 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.4 铜绿假单胞菌 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.5 霉菌和酵母菌总数 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.6 安全性 按《化妆品安全技术规范2015年版》规定的方法进行。 5.3.7 净含量及允许短缺量 按JJF 1070-2023 规定的方法进行。 4.7 净含量及允许短缺量 产品的规格应根据市场需求来设定,同时,所允许的短缺量必须遵守《定量包装商品计量监督管理办法》中的相关规定。 5 试验方法 5.1 感官 取产品适量置于白色瓷盘中,在室内自然光线下观察形态、色泽、杂质、细度,嗅其味道。
Technical Code for Production of Powder Healthcare Products
4.1 要求 4.1.1 艾绒的原料应为菊科蒿属植物,包括Artemisia argyi艾、Artemisia princeps魁蒿、Artemisia vulgaris北艾,或其他被证明适合经加工制成艾绒的蒿属植物干燥叶片。 在艾叶采摘、交售、收购和加工过程中应避免混入外来物。艾叶应在干燥、通风的环境下保存至少1 年,剔除根、茎、梗及泥土、砂石,方可用于加工制成艾绒。原料艾叶与艾绒的产出比例至少应为 3:1,即 3 千克的干燥艾叶经加工制成最多1 千克的艾 绒。艾绒应洁净、无异物、无异味、无霉变。 未经粉碎的干燥艾叶原料标本应符合《中国药典》2020年版描述的以下性状特征:艾叶多皱缩、破碎、有短柄。完整叶片展平后呈卵状椭圆形,羽状深裂,裂片椭圆状披针形,边缘有不规则的粗锯齿;上表面灰绿色或深黄绿色,有稀疏的柔毛和腺点;下表面密生灰白色绒毛。质柔软,气清香、味苦。 4.1.2 未经粉碎的干燥艾叶原料的挥发油指纹图谱与对照图谱比较的相似度应在 80%以上。 4.2 艾绒外观 艾绒为淡黄色、灰黄色、土黄色、灰绿色、暗绿色或灰黄带灰绿色的绒团。偶见游离颗粒状叶片组织与艾叶梗茎。触之柔软具弹性,手捻搓易成团。气清香或微香,具有艾绒独特的香气。点燃后生成白色或浅灰色烟雾,具有特殊香气。 4.3 艾绒显微特征 在 20×10 倍光学显微镜下观察艾绒可见:T 型毛众多,大多相互缠结成乱团状。其顶细胞细长,弯曲或扭曲,直径 5~18μm,长 210~960μm,极少可达 1000μm以上,碎断者极少见,两端渐尖,中部可见类圆形、卵圆形或椭圆形的柄部脱落痕;柄部几全部脱落至多数碎落,残留的柄部或其残段为1~6 个类方形或长方形细胞,有的中部略膨大。叶肉组织碎块(栅状细胞和海绵组织)及叶片碎块少见,呈不规则形,大小不等,类黄色、棕黄色、黄棕色或暗棕色;其中有的可见细长的螺纹导管,稀见具缘纹孔导管及网纹导管,导管多相聚或与纤维相伴,直径 5~30μm;有的碎块密布细小草酸钙簇晶,直径 3~12μm,并可见细胞成对排列的鞋底形腺毛(顶面观);纤维极少见或少见,直径 7~20μm,末端渐尖。表皮碎片偶见至多见,具不定式气孔。不应有其他形态、大小、颜色不同的非腺毛、腺毛、纤维、导管或其他植物组织、细胞。 4.4 艾绒质量分级 按照以下分级方法进行:取艾绒样品分别检测艾绒含末率、蓬松度、微观粉碎度。依据表1,若三项均在Ⅰ级限定值则判定为Ⅰ级,适用于直接灸用艾绒;若三项指标均优于合格值而未达到Ⅰ级限定值,则判定为Ⅱ级,适用于艾条灸用艾绒;若有一项不合格,则该批次艾绒判定为不合格产品。 表1 艾绒质量分级参数 项目 Ⅰ级(直接灸用艾绒) Ⅱ级(艾条灸用艾绒) 不合格 含末率(%) <7.0 7.1~15.0 >15.0 蓬松度(mm) >65 40~65 <40 微观粉碎度(%) >85 60~85 <60 5 原料 5.1 原料要求 艾绒由纯艾草研磨加工而成,艾叶符合《中国药典》2020 年版一部的有关规定。 5.1.1 卷纸为桑皮纸、纯棉纸、烟纸、艾条纸、白棉纸、艾叶纸。 5.2 感官指标 项目 优级品要求 合格品要求 形态 外形均匀,不同规格直径,长度误差率 <1.6% 外形均匀,不同规格直 径,长度误差率介于1.6%-5% 色泽 黄色 灰褐色 气味 艾草清香 艾草清香 杂质 无明显可见梗叶碎片及杂质 可见少量杂质 5.3 理化指标 项目 合格品要求 汞(以Hg计),mg/kg <1 砷(以As计),mg/kg <10 铅(以Pb计),mg/kg <40 农药残留 不得检出 水分 <17% 5.4 卫生指标 项目 优级品要求 合格品要求 霉落总数 CFU/g ≤300 <500 霉菌 CFU/g ≤50 <100 5.5 燃烧状态 常温室内点燃,可燃烧完全。 5.6 安全性 按《化妆品安全技术规范》(2015年版)规定的办法进行。无毒、无害、对皮肤无刺激性。 5.7 艾绒净含量及艾条(柱)重量 5.7.1 艾绒净含量应与包装标示一致。 5.7.2 不同规格重量应在标示重量±5%内。 6 试验方法 6.1 随机抽出本品3支,在自然光线下观察形态、色泽、杂质,嗅其气味。 6.2 性状与鉴别 取未经粉碎的干燥艾叶原料标本适量,肉眼观察,轻嗅其气味。取艾绒样品适量,平铺于白色容器上,肉眼及放大镜下观察其形态和颜色,用手指捻揉、揉捏以判断其质地等相关性状特征,点燃以判断其燃烧特征;轻嗅其气味。按《中国药典》(2020年版四部)显微鉴别法 的规定进行。取艾绒样品约1.0mg,水合氯醛液制片,显微镜下观察。 6.3 原料艾叶挥发油指纹图谱的测定按附录A规定执行。 6.4 艾绒样品的水分测定按照《中国药典》(2020年版四部)通则0832第四法甲苯法规定执行。 6.5 艾绒样品的微观粉碎度测定按附录B规定执行。 6.6 艾绒样品的含末率测定按附录C规定执行。 6.7 艾绒样品的蓬松度测定按附录D规定执行。
Technical Code for Production of MOXA Stick(Column) Healthcare Products
本文件规定了游离DNA保存采血管的产品总体要求、试验方法、检验规则,以及色标、生产商提供的信息、生产条件、运输及贮存、有效期等。
Cell-free DNA Preservative Tube
4 方法原理 4.1 基于 CTC 和血球细胞之间的特性差异,利用非抗体依赖的方法捕获 CTC 并通过细胞染色、免疫细胞化学、荧光原位杂交或逆转录聚合酶链式反应法对捕获细胞进行分析鉴定。 4.2 非抗体依赖的方法包括无标记捕获探针法(见 9.2.1)、多肽捕获探针法(见 9.2.2)、膜过滤法(见附录 C)和微流控芯片法(见附录 D)等。非抗体依赖磁分离方法包括但不限于以下两种: ——无标记捕获探针法:CTC 在一定密度梯度介质中通过离心力进行分层分离后,利用无标记的顺磁性纳米磁性微粒捕获CTC,并在外加磁场的作用下实现CTC与其他血液成分有效分离和富集; ——多肽捕获探针法:利用多肽修饰的磁性微粒捕获外周血中的 CTC,多肽捕获探针与外周血中的 CTC 稳定结合,并在外加磁场的作用下实现 CTC 与其他血液成分有效分离和富集。 5 检测条件 检测条件如下: ——温度:25 ℃±5 ℃; ——相对湿度:30%~65%; ——压强:标准大气压。 6 试剂材料和仪器设备 试剂材料和仪器设备应符合附录A的要求。 7 检测流程 7.1 外周血中 CTC 检测流程见图 1。 7.2 CTC 磁分离检测操作见附录 B。 8 样本制备 8.1 血液样本采集 8.1.1 采血前准备肝素/EDTA-K2 真空抗凝管。 8.1.2 采血量宜为 4 mL~15 mL,采血收集完毕后,应立即颠倒混匀采血管不少于 5 次,不宜剧烈震荡,产生气泡。 8.1.3 血样应在 4 ℃~8 ℃环境下保存,72 h 内进行 CTC 检测。 8.2 样本前处理 8.2.1 密度梯度离心法 8.2.1.1 离心前检查血样,无溶血、凝块即为合格样本。 8.2.1.2 将细胞密度梯度分离液置于 37 ℃水浴预热 15 min。水浴锅水位应高于样本液面,确保容器内样本达到目标温度。 8.2.1.3 预热后依次加入 15 mL 离心管中。 8.2.1.4 手握采血管两端,轻缓 180°翻转采血管 8 次~10 次,充分混匀外周血样本。 8.2.1.5 取 1 mL 混匀的血样,按照 1:3 比例加入 3 mL 1×PBS 稀释,用吸管将稀释后的血液缓缓加入密度梯度分离液上层。 注:PBS为磷酸缓冲盐溶液(Phosphate Buffered Saline)。 8.2.1.6 放置离心机中 400 g~450 g,离心 30 min~40 min。 8.2.1.7 离心后分层界面清晰,离心后溶液分为 3 层:上层为血浆层,中层为白膜层,下层为红细胞层。中层为目的细胞收集层,目的细胞层中间有以单个核细胞为主的白膜带,目的细胞截留率>85%。 8.2.1.8 用吸管去除上层血浆后,再将中层目的细胞收集层(2.5 mL~6.5 mL 之间)全部转移至 15 mL 离心管中,加入 PBS 定容至 12 mL,盖紧管盖,轻缓 180°翻转离心管数次,放置于离心机中 300 g~350 g,离心 5 min~7 min。 8.2.1.9 离心后,保留底部约 100 ?g 液体。加入适量 PBS 重悬细胞。 8.2.2 红细胞裂解法 8.2.2.1 取样:宜在 4 ℃条件下操作,取 1 mL 新鲜抗凝血于离心管中。 8.2.2.2 裂解:按照 1:3 比例在离心管中加入 3 mL 1×红细胞裂解液,裂解 5 min。 8.2.2.3 离心:在室温下,500 g 离心 5 min,弃红色上清液。 8.2.2.4 二次裂解离心:若发现红细胞裂解不完全,可以重复裂解(见 8.2.2.2)和离心(见 8.2.2.3)一次。 8.2.2.5 洗涤:加入适量 1×PBS,轻柔混匀重悬沉淀,在室温下,500 g 离心 5 min。 8.2.2.6 沉淀:离心后去除上清液,用适量 1×PBS 重悬沉淀细胞。 9 样本检测 9.1 检测准备 9.1.1 CTC 捕获探针活化和分散性评估 9.1.1.1 用镊子夹住管壁,离心管倾斜 45°,打开超声清洗仪,左右激烈晃动,保持 1 min 以上。 9.1.1.2 取 2 μL 活化后的 CTC 捕获探针均匀铺在载玻片上,肉眼观察无明显沉淀与絮状物。 9.1.1.3 必要时于显微镜下观察,要求能均匀分散为细小粒子悬浮于分散介质中而不沉淀、不抱团,CTC 捕获探针活化完成。 注1:活化是减少材料团聚,提升材料反应活性,对材料进行化学处理改善材料分散性的处理过程。 注2:分散性指材料在水或其他均匀液体介质中,能均匀分散为细小粒子悬浮于分散介质中而不沉淀的性能。 注3:分散性评估指用超声清洗仪充分超声分散探针,取少量用粒径分析仪检测探针的粒径分布,其中多分散指数 (Polydispersity Index,PDI)≤0.3,说明分散性良好。 9.1.2 涂片放置 进行离心涂片前按“载玻片+滤纸+涂片漏斗”的顺序依次对齐放置,涂片漏斗孔和滤纸孔对齐;在涂片机上按载玻片正面贴紧滤纸,光滑面朝外的方式夹紧,应无缝隙。 9.2 CTC 磁分离捕获 9.2.1 无标记捕获探针法 9.2.1.1 将洗涤后的细胞沉淀用少量 PBS 重悬在 1.5 mL 离心管中,定容至 1 mL。 9.2.1.2 取适量磁性纳米探针加入 1.5 mL 离心管中。 9.2.1.3 将加有磁性纳米探针的离心管放置于迷你旋转培养器上,在 4 ℃条件下混匀 6 min~8 min。 9.2.1.4 取出离心管后立即置于多功能磁分离器上,在 4 ℃条件下磁吸附 6 min~8 min。 注:磁吸附为磁性材料在外加磁场的作用下,从液相中自发地发生材料运动并吸附至磁铁的现象。 9.2.1.5 用单道移液器缓慢吸掉上清液,并重新加入适量 PBS,再次颠倒混匀后,立即放入多功能磁分离器,在 4 ℃条件下磁吸附 8 min~10 min。 9.2.1.6 用单道移液器缓慢吸掉上清液,取出离心管,加入适量 PBS,将 CTC 捕获探针捕获的细胞轻轻吹打混匀,制备细胞混悬液。 9.2.2 多肽纳米探针法 9.2.2.1 取混合均匀的抗凝血至离心管中,用 PBS 稀释抗凝血。 9.2.2.2 将多肽纳米探针涡旋混匀后,取 10 μL 多肽纳米探针至 2 mL 稀释后的外周血中,混匀后,37 ℃孵育 1 h。 9.2.2.3 孵育结束后,将离心管放置在多功能磁分离器上,磁吸附分离 30 min。 9.2.2.4 加入 PBS 洗涤,将离心管放置在多功能磁分离器上,缓慢吸掉上清液,重复 2 次~3 次。 9.2.2.5 将富集细胞用适量 PBS 重悬混匀为细胞混悬液。 注:除磁分离方法,非抗体依赖还有膜过滤法、微流控芯片法等;膜过滤法见附录C,微流控芯片法见附录D。 9.3 细胞制片 9.3.1 取出干净的载玻片,标记样本信息及检测时间,按“涂片漏斗+滤纸片+载玻片”的顺序对齐贴合好后放进离心涂片机中。 9.3.2 将 0.2 mL~0.5 mL 细胞混悬液加入相应标注的涂片漏斗加样管中,启动离心涂片机,室温下 800 r/min 离心 5 min,离心完成后,轻缓取下载玻片。 注1:样本稀释后(即细胞混悬液),轻度浑浊,细胞浓度过高,会造成细胞相互堆叠,影响观察及鉴定;细胞浓 度过低,则涂片中细胞稀疏,容易造成假阴性。 注2:离心速度过低,细胞结构不清晰,离心速度过高,细胞容易破坏。 9.3.3 制片结果为细胞呈单层、分布均匀、细胞形态清晰、结构完整。 9.3.4 细胞制片适用无标记捕获探针法、多肽纳米探针法、微流控芯片法,膜滤法无需要采用细胞制 片。 9.4 CTC 鉴定 9.4.1 细胞病理鉴定法(常规染色) 细胞病理染色鉴定按以下步骤进行: a) 细胞固定:将制片后得到的细胞片室温晾干,用细胞固定液固定 10 min~15 min; b) 细胞染色:去掉细胞固定液,室温晾干后,依次用细胞质染色液、细胞核染色液进行染色,每种染色液染色 1 min~2 min; c) 封片:细胞染色后,蒸馏水冲洗 2 次~3 次,室温晾干,用封片剂封片; d) 观察:用 10 倍和 40 倍显微镜下观察细胞形态及染色情况,细胞质与细胞核结构清晰后,细胞间没有重叠,非细胞区域没有或仅有微量残留染色液; e) 识别:在 100 倍显微镜下,根据细胞病理学特征识别肿瘤细胞。 9.4.2 免疫细胞化学和免疫荧光法 9.4.2.1 免疫细胞化学按以下步骤进行: a) 细胞固定:将制片后得到的细胞片室温晾干,细胞固定液固定 10 min~20 min,将细胞片浸入PBS 缓冲液中清洗 3 次,每次 5 min; b) 通透(针对胞内抗原):用 0.2% Triton X-100 通透细胞 10 min,用 PBS 缓冲液漂洗 3 次,每次 5 min; c) 封闭:按试剂说明书使用内源性过氧化物酶封闭液封闭,PBS 浸泡 2 次,每次 5 min;非特异性封闭:将反应位置用组化笔画圈,滴加 5% BSA 封闭液,封闭 30 min; d) 一抗孵育:倒去 BSA 封闭液,将稀释好的一抗(CK、CD45)直接滴加到反应位置,37 ℃湿盒孵育 1 h~2 h,弃去一抗,用 PBS 缓冲液漂洗 3 次,每次 5 min; 9.4.3 荧光原位杂交法 荧光原位交杂法按以下步骤进行: a) 细胞固定:将制片后得到的细胞片室温晾干,滴加细胞固定液固定,室温晾干; b) 漂洗:将片子置于 2×SSC 缓冲溶液中漂洗 2 次,每次 5 min; 注:SSC为柠檬酸钠缓冲液(Saline Sodium Citrate buffer)。 c) 消化:滴加适量 0.04%胃蛋白酶溶液,室温消化细胞 10 min~20 min,2×SSC 缓冲液中浸泡洗涤 2 次,每次 5 min; d) 脱水:在 70%、85%和 100%梯度乙醇依次梯度脱水各 5 min,室温晾干; e) 杂交:在暗室,取出探针(见附录 E),室温静置 5 min,用手指轻弹离心管底部,混匀探针后短暂离心,加 10μL 探针溶液至杂交区域,立即盖上盖玻片,探针在盖玻片下均匀展开,用封片胶封片。将玻片置于杂交仪上,45 ℃变性 2 h,或 88 ℃变性 2 min; f) 洗涤:在暗室,用镊子小心撕掉盖玻片周围封片胶,避免粘掉或者移动盖玻片,将片子浸入 2×SSC 中约 0.5 min 后取出,用镊子轻轻将盖玻片揭掉;将玻片置于 2×SSC,室温洗涤 1 min~2 min;取出片子浸入提前 68 ℃预热的杂交后洗涤液(0.4×SSC/0.3% NP-40)中洗涤 2 min~5 min;取出片子浸入提前预热的去离子水中洗涤 1 min,在暗处自然干燥片子; g) 复染:在暗室晾干片子后,将 10μL 的 DAPI 染色液滴于杂交区域,立即盖上盖玻片放置暗处染色 10 min~20 min。复染步骤中不能立刻进行荧光显微镜观察的玻片应置于-20 ℃条件下保存。 9.4.4 逆转录聚合酶链式反应法(RT-PCR) 9.4.4.1 RNA 提取按以下步骤进行: a) 细胞匀浆化:取富集的细胞混悬液,400 g 离心 5 min,加入适量 Trizol 反复吹打,溶解细胞; b) 分离 RNA:加入氯仿[氯仿:Trizol(1:5)],盖好 EP 管上下颠倒剧烈震荡,冰上静置 5 min~10 min,直至上下分层清晰。4 ℃条件下,13 400 g 离心 15 min,样本会分为三层:有机相、中间层和上层无色的水相(RNA 在水相中),收集上清液; c) 沉淀 RNA:上清液中加入等量异丙醇,颠倒 5 次,室温静置 10 min,4 ℃条件下,13 400 g 离心 15 min,离心后在离心管管侧和管底形成胶状沉淀,弃去上清液; d) RNA 洗涤脱盐:加 75%乙醇(用 DEPC 水配制)轻弹底部洗涤沉淀,4 ℃条件下,9 390 g 离心5 min,弃去上清; 注:DEPC为焦碳酸二乙酯(Diethyl Pyrocarbonate)。 e) RNA 干燥和再溶解:取出滤纸,将 EP 管敞开放在滤纸上,管口向酒精,但不应完全干燥;20 μL~30 μL 的 DEPC 水溶解,取 2 μL 电泳检测完整度(1.5%琼脂糖凝胶电泳,主要观察 28 s、18 s 和 5 s 三条带是否清晰),2μL 用于紫外分光光度计比色,其余冻存于-70 ℃冰箱。 9.4.4.2 逆转录反应按以下步骤进行: a) RNA 定量:用紫外分光光度计确定 RNA 浓度并定量; b) 去除 DNA:在无 RNA 酶的 200 μL 干净试管内依次加入 2 μL 细胞总 RNA,2 μL 250 pmoL 随机引物,2μL 2.5 mmol/L 的 dNTP 以及 10μL无 RNA 酶水混匀,瞬时离心后于 70 ℃中 5 min,冰浴中淬冷; c) 逆转录:然后加入 2 μL 10×逆转录缓冲液,1 U/μL 逆转录酶,1 U/μLRNA 酶抑制剂,混匀,瞬时离心后 42 ℃反应 60 min,95 ℃加热 10 min 灭活逆转录酶,-20 ℃保存。 9.4.4.3 PCR 扩增应按以下步骤进行: a) PCR 扩增体系(25 μL):包括 DEPC 水(可用高压双蒸水)17.5 μL,10×Taq buffer 2.5μL,MgCl2 2.0 μL,10 moL/L dNTP Mix 0.5μL ,上游引物 0.5 μL,下游引物 0.5 μL,Tap 酶(5u/μL)0.5 μL,cDNA 模板 1.0 μL; b) PCR 扩增条件:94 ℃预变性 2 min,94 ℃变性 20 s,55 ℃退火 30 s,60 ℃延伸 40 s,45 个循环; c) 循环扩增反应结束后查看扩增曲线及 Ct 值。 9.4.4.4 相应的引物扩增相应的基因靶点,逆转录聚合酶链式反应靶点见附录 F。 9.4.4.5 常规 PCR 扩增后需采用凝胶电泳、核酸探针杂交等方法分析 PCR 扩增产物。 9.4.5 基因测序法 9.4.5.1 DNA 提取按以下步骤进行: a) 将 1 mL EDTA 抗凝-20 ℃冻存血液室温解冻后用预冷红细胞裂解液裂解,重复 1 次; b) 沉淀的白细胞团用 STE 缓冲液混匀,加入 SDS 核蛋白酶 K 裂解细胞,消化蛋白; c) 裂解过夜后,加入等体积 Tris 饱和苯酚溶液,转动混匀有机相和水相; d) 离心后用大口吸管转移水相,重复用 Tris 饱和苯酚溶液抽提一次; e) 加等体积氯仿:异戊醇(24:1),离心,小心转移收集水相,重复一次; f) 加入 1/5 体积醋酸钠混匀,再加入 2 倍体积-70 ℃预冷无水乙醇,混匀出现白色絮状,离心收集沉淀; g) 用 2 mL 的 70%乙醇洗涤 2 次,室温挥发干燥,不宜使 DNA 完全干燥; h) 加灭菌的 TE(pH 7.4~8.4)缓冲溶液 2 9.4.5 基因测序法 9.4.5.1 DNA 提取按以下步骤进行: a) 将 1 mL EDTA 抗凝-20 ℃冻存血液室温解冻后用预冷红细胞裂解液裂解,重复 1 次; b) 沉淀的白细胞团用 STE 缓冲液混匀,加入 SDS 核蛋白酶 K 裂解细胞,消化蛋白; c) 裂解过夜后,加入等体积 Tris 饱和苯酚溶液,转动混匀有机相和水相; d) 离心后用大口吸管转移水相,重复用 Tris 饱和苯酚溶液抽提一次; e) 加等体积氯仿:异戊醇(24:1),离心,小心转移收集水相,重复一次; f) 加入 1/5 体积醋酸钠混匀,再加入 2 倍体积-70 ℃预冷无水乙醇,混匀出现白色絮状,离心收 集沉淀; g) 用 2 mL 的 70%乙醇洗涤 2 次,室温挥发干燥,不宜使 DNA 完全干燥; h) 加灭菌的 TE(pH 7.4~8.4)缓冲溶液 2 9.4.5 基因测序法 9.4.5.1 DNA 提取按以下步骤进行: a) 将 1 mL EDTA 抗凝-20 ℃冻存血液室温解冻后用预冷红细胞裂解液裂解,重复 1 次; b) 沉淀的白细胞团用 STE 缓冲液混匀,加入 SDS 核蛋白酶 K 裂解细胞,消化蛋白; c) 裂解过夜后,加入等体积 Tris 饱和苯酚溶液,转动混匀有机相和水相; d) 离心后用大口吸管转移水相,重复用 Tris 饱和苯酚溶液抽提一次; e) 加等体积氯仿:异戊醇(24:1),离心,小心转移收集水相,重复一次; f) 加入 1/5 体积醋酸钠混匀,再加入 2 倍体积-70 ℃预冷无水乙醇,混匀出现白色絮状,离心收 集沉淀; g) 用 2 mL 的 70%乙醇洗涤 2 次,室温挥发干燥,不宜使 DNA 完全干燥; h) 加灭菌的 TE(pH 7.4~8.4)缓冲溶液 2μL~50 μL溶解 DNA,-20 ℃保存。 9.4.5.2 PCR 扩增:同 9.4.4.3。 9.4.5.3 测序:按测序仪说明书操作进行对 PCR 纯化产物进行测序,分析测序结果,宜根据不同癌种的选择测序方式,测序类别见附录 G。~50 μL 溶解 DNA,-20 ℃保存。 9.4.5.2 PCR 扩增:同 9.4.4.3。 9.4.5.3 测序:按测序仪说明书操作进行对 PCR 纯化产物进行测序,分析测序结果,宜根据不同癌种的选择测序方式,测序类别见附录 G。 10 测定结果有效性判定 细胞病理鉴定法 10.1.1 病理学中不同类型的肿瘤细胞主要有以下六项形态特征: ——细胞长直径>15 ?m; ——细胞核质比>0.8; ——细胞质内常见空泡或脂肪粒; ——细胞核深染且染色不均,核仁明显; ——核形态不一,可为巨核、双核或多核; ——细胞表面褶皱或边界清楚。 10.1.2 若测定结果明确不是外周血中的正常白细胞,且满足上述 3 项或 3 项以上特征则判定测定结果有效;否则,测定结果判定为无效。 10.2 免疫细胞化学和免疫荧光法 10.2.1 测定结果有效性如下: ——阳性对照:阳性对照可作为正确样本准备和适当染色技术的指示。每次染色应与同一测试条件下的阳性对照片进行比较。阳性对照仅用于监控步骤的正确执行和试剂的测试,并不用于帮助叙述样本的明确诊断,若阳性结果不能显示适当的阳性染色,则该批次实验测试样本的结果认为是无效的; ——阴性对照:每次染色应与同一测试条件下的空白对照试剂进行对比。空白试剂代替抗体对玻片进行染色用来判断非特异性着色,并对抗原部位特异性染色提供更好的解释,空白对照试剂的孵育时间应与抗体一致; ——肿瘤细胞和正常细胞应同时具备细胞核染色。阳性标记免疫特征,可分为弱阳性(+)、中等阳性(++)、强阳性(+++)三级,免疫酶标记表现为淡黄色细颗粒、棕黄色颗粒和褐黄色粗颗粒,后者耀眼易见。免疫荧光法则表现为浅绿色荧光、明显绿色荧光和亮绿色耀眼荧光。 10.3 荧光原位杂交法 10.3.1 测定结果有效性如下: ——阳性对照:细胞染色体任意两个以上位点(含两个)出现异常或一个位点有两种以上(含两个)异常(基因删除/扩增、基因融合或基因重排); ——阴性对照:细胞染色体无异常信号。 10.3.2 染色体异常且细胞核染色阳性的细胞为肿瘤细胞,染色体异常有基因删除/扩增、基因融合或基因重排,判定方法如下: ——基因扩增:单色探针通常计数每个肿瘤细胞信号的绝对量,而双色探针则计算每个肿瘤细胞靶基因位点信号与参考染色体信号的比值; ——染色体易位:可发生在染色体内或染色体间。少数情况下,易位也可出现其中一个分离探针信号的丢失; 注1:发生在染色体内,以分离探针信号之间达到1倍~2倍信号直径的间距判定易位。 注2:发生在染色体间,应有清楚的独立信号。 ——基因缺失:在应用单色探针(即没有参考染色体探针)时,需要增加计数细胞的数量,避免由于玻片导致的信号缺失而判读为阳性结果;双色探针以上的多色探针对其中的每种信号可以有不同的阈值要求。 10.4 逆转录聚合酶链式反应法(RT-PCR) 10.4.1 测定结果有效性如下: ——阳性对照:有典型 S 型扩增曲线(确定扩增体系有效); ——阴性对照:为直线或轻微斜线,无指数增长期(排除扩增体系出现污染); ——PCR 熔解曲线是单峰曲线; ——扩增曲线指数扩增区域,复孔之间 CT 值标准偏差应<0.2; ——阈值设置合理(设置在指数增长区); ——扩增效率在 90%~110%之间,标准曲线 R>0.99、R2>0.98;标准方差应<0.2。阳性处理 结果 Ct 约为 15~30;阴性对照结果 Ct>35。 10.4.2 结果判定: ——阴性:F≤A; ——阳性:F>A。F=2-??Ct,??Ct=(Ct 检测组基因 1-Ct 检测组基因 2)-(Ct 对照组基因 1-Ct 对照组基因 2),其中基因1 为 EpCAM、CK19 等待检基因,基因 2 为?-Actin,GAPDH 等内参基因,Ct 是检测样本的阈值; ——A 为特定基因(如 EpCAM、CK19 等)的相对基因量在阴性样本与阳性样本之间的临界值。 10.5 基因测序法 10.5.1 测定结果有效性如下: ——测序结果为单个峰且与其他峰的交错较少,表明测序结果有效; ——若单个峰的一个位点出现多个峰,表明测序结果无效。 10.5.2 结果判定: ——阳性:检测到特定基因突变;阳性判断值为突变比例不低于 0.4%,测序有效深度不低于 500×,突变绝对拷贝数不低于 2,链平衡性介于 0.1~0.9 之间(融合不适用); ——阴性:未检测到特定基因突变。 示例:特定基因突变,如:EGFR 基因/20 号外显子 p.T790 错义突变/c.2369C>T/P.Thr790Met,突变丰度为 1.22%。 11 测定结果 11.1 测定结果表述 11.1.1 细胞病理鉴定法 11.1.1.1 在 2 mL 血样中检出单个 CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇即为阳性,在恶性实体肿瘤中CTC 不少于 5 个时,提示临床预后差。 11.1.1.2 在 2 mL 血样中进行检测,未检测到单个 CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇即为阴性,提示检测样本无 CTC。 11.1.1.3 结果应按照合适的病人管理程序与来自诊断测试(即影像学、实验室检查)、体检和完整病史等信息结合使用。 11.1.2 免疫细胞化学和免疫荧光法 11.1.2.1 在 2 mL 血样中检出有棕黄色着色或表现绿色荧光的抗原阳性(如 EpCAM、CK19 等)的单个CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇。 11.1.2.2 在 2 mL 血样中未检测出有棕黄色着色或表现绿色荧光的抗原阳性(如 EpCAM、CK19 等)的单个 CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇。 11.1.3 荧光原位杂交法 11.1.3.1 在 2 mL 血样中检出染色体异常(基因删除/扩增、基因融合或基因重排)的单个 CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇。 11.1.3.2 在 2 mL 血样中未检测出染色体异常(基因删除/扩增、基因融合或基因重排)的单个 CTC、白细胞群围绕的 CTC 或 CTC 团簇。 11.1.4 逆转录聚合酶链式反应法(RT-PCR) 11.1.4.1 在 2 mL 血样中检出特定生物标志物(如 EpCAM、CK19 等)扩增异常/表达异常的 CTC。 11.1.4.2 在 2 mL 血样中未检出特定生物标志物(如 EpCAM、CK19 等)扩增异常/表达异常的 CTC。 11.1.5 基因测序法 11.1.5.1 在 2 mL 血样中检出具有特定基因突变(如 EGFR、Her2 等)的 CTC。 11.1.5.2 在 2 mL 血样中未检出具有特定基因突变(如 EGFR、Her2 等)的 CTC。 11.2 测定结果使用 11.2.1 荧光原位杂交法、逆转录聚合酶链式反应法(RT-PCR)均要求应在同一次实验中同时满足,否则本次实验无效,应重新实验。 11.2.2 11.1 方法获得的最终结果应按照合适的采样者管理程序与来自诊断测试(即影像学、实验室检查)、体检和完整病史等所有的临床信息结合使用。 12 注意事项 12.1 安全管理 实验室安全管理及工作人员行为符合GB 19489的规定。工作人员处理血液的全部操作应戴乳胶一次性手套、口罩和实验帽。 12.2 试剂材料防污染 应对实验室进行功能分区,各区的工作服实验用具和实验记录本应区分标记,不应混用。注意因交谈或其他活动造成的飞沫、落尘带入的污染,必要的情况下在超净工作台中进行操作。 12.3 废弃物处理 操作区应有专门的固体和液体废弃物收集容器,废弃物应进行无害化处理。
Non-antibody-dependent magnetic separation detection method of circulating tumor cells in peripheral blood
本文件规定了口罩细菌过滤效率检测仪的性能要求、试验方法、检验规则及标志、包装、运输、贮存。本文件适用于双路对比采样的口罩细菌过滤效率检测仪。
Mask Bacterial Filtration Efficiency Detectors
本文件规定了一次性静脉输液针静脉输液的操作前准备、操作流程、操作后处理、注意事项等内容。 本文件适用于一次性静脉输液针静脉输液。
Operating specifications for intravenous infusion with disposable intravenous infusion needles
Copyright ©2007-2022 ANTPEDIA, All Rights Reserved
京ICP备07018254号 京公网安备1101085018 电信与信息服务业务经营许可证:京ICP证110310号