离心机和转头 微量离心管或微量滴定板

材料

缓充液和溶液
去离子蒸馏水（冰预冷）

二硫苏糖醇（DTT)(100 mmol/L)

dNTP 和 ddNTP，dNTP(0.5 mmol/L) 和 ddNTP(0.5 mmol/L) 储液

5X 标记混合液和 ddNTP 延伸/终止混合液（ddCTP、ddTTP、ddATP、ddGTP)
这些反应混合液可按表 12-5 给出的溶液体积混合配制。

甲酰胺上样缓冲液

测序酶稀释缓冲液

10 mmol/L Tris-Cl(pH7.5)
5 mmol/L DTT
0.5 mg/ml 牛血淸白蛋白
-20°C 储存

5X 测序酶反应缓冲液，含 MgCl₂

200 mmol/LTris-Cl(pH7.5)
100 mmol/L
125 mmol/LNaCl
-20°C 储存



5x 测序酶反应缓冲液，含 MnCl₂

200 mmol/LTris-Cl(pH7.5)
25 mmol/LMnCl₂
125 mmol/LNaCl
-20°C 贮存
在测序酶反应缓冲液中含有 Mn²⁺可以增加测序酶利用 ddNTP 的效率，即使有 Mg²⁺存在也是如此 (TaborandRichardsonlSS%)。结果使在测序反应中靠近引物部分产生有效终止，进而增强靠近寡核苷酸引物处条带的强度，或者当使用 dITP 碱基类似物时，有利于消除富含 GC 区序列的影响。
为了使用 Mn²⁺，可在加入测序之前在标记反应中加入 1ul 含有 MnCl₂ 的 5x 测序酶反应缓冲掖 (Fuller et al.1996) 或者加入 0.01 体积的 1mol/L MnCI₂ 至双脱氧-dNTP 廷伸/终止混合液中（Kristmse et al.1990)。含锰的缓冲液如呈淡黄色或产生黄褐色沉淀将不能使用。

TE(pH7.6)

酶和缓冲液

测序酶（2.0 版）
测序酶由生产商提供，浓度为 13u/ul(约 lmg/ml)。-20°C 储存（不要使用无霜冰箱）。

酵母无机焦磷酸酶
可选用，请参见步驟 6。厂商（USB/Amersham Life Science 公司）提供的酶浓度为 5u/ml，它可催化焦磷酸水解为 2 分子正磷酸盐。
焦磷酸酶与测序酶以 1:3 的比例混合，最好采用等体积混合两种酶，并用 6 倍体积的酶稀释缓冲液稀释该混合钧。测序酶的工作浓度为 1.6u/ul, 同时加入足量焦磷酸酶以防止焦磷酸的积累，每个测序反应需 2ul 稀释的酶混合液。

核酸和寡梭苷酸

寡核苷酸引物
浓度为 0.5pmol/ul(约 3.3ng/ul), 溶于水或 TE(pH7.6) 中。
请参见信息栏"DNA 测序寡核苷酸引物储液制备”。对于一些结合于靶区域上游载体序列的通用引物, 可参见第 8 章信息栏“通用引物”。

模板 DNA(lug/ul) 溶于 TE(PH7.6) 中
每一套测序反应需要 1ug 单链 DNA 或 2.0ug 变性双链质粒 DNA。双链线性 DNA 需要变性，并使它与引物复性。即先把天然模板 DNA 与过量的引物混合，在沸水浴中加热约 2 min, 然后把试管插入冰水浴中。不要让混合液溫度回升，立刻使用。
小规模制备 M13 噬菌体重组于单链 DNA 的浓度一般在 0.05-0.5ug/ml 的范围内。这取决于特定噬菌体的生长速度。在正常测序反应条件下，模板 DNA 是过量的。因而毎次测序反应中模板量上的微小变化并不影响测序结果的质量。可参见本方案末尾的表 12-6。

放射性化合物

[a-³⁵S]dATF(1000Ci/mmol，10mCi/ml) 或
[a-³³P]dATP(1000~3000Ci/mml, 约 20mCi/ml) 或
[a-³²P]dATP(1000Ci/mmol,10mCi/ml)
若不用放射性标记的 [³²P]dATP 作为内标记，也可以用 5'端以 ³⁵P 标记的寡核苷酸引物进行测序反应，此时可用 2ul 放射性标记引物（约 5X10⁵cpm; 约 0.5ng) 和 2ul 水代替反应中的未标记引物（步骤 1) 和放射性标记 dATP(步骤 7), 其他步骤相同。一般用多核苷酸激酶催化 ATP 的 [γ-³²P] 转移至寡核苷酸 5‘末端。详细步骤见第 10 章的方案 2。

离心机和转头

离心转头或用于 0.5 ml 微量离心管的衔接头，以及甩平式转头和微量滴定板架 (如 Sorvall 公司产品），聚苯乙烯泡沬或橡胶衬垫。

专用设备

微量离心管（0.5 ml）或微量滴定板（柔韧，耐热，每孔容量约为 300ul 的 U 型底 96 孔板)
参见信息栏“微量滴定板”。

可加热到 37°C 和 65°C 的水浴或加热板。

方法

重要：当测序的双链质粒 DNA 已经变性，并已与引物退火（方案 2), 可以忽略本方案的前两步. 直接从步骤 3 开始。

1. 在 0.5 ml 微量离心管或微量滴定板孔中加入：

单链模板 DNA(1ug/ul)                          1ul
寡核苷敢引物（约 1ng/ul)                    3ul
5X 测序酶反应缓冲液                           2ul
含 MgCl₂ 或 MnCl₂
水                                                         至终体积 10ul

2. 封闭试管，在 65°C 温育 2 min，然后取出离心管，使之在 3~5 min 内冷却至室温。
有些实验人员喜欢用小加热板或装水的烧杯，使该退火反应在 30 min 的过程中缓慢冷却。我们实验中发现，这两种方法的实验结果相同。

3. 在引物和模板降温时，融化 5X 标记混合液、ddNTP 延伸/终止混合液和放射性标记的 dATP，融化后置于冰上。若有必要，退火的棋板和引物可在-20°C 下保藏几个月。

4. 取 2.5ul 每种 ddNTP 延伸/终止反应混合液加至用彩色标记或用字母 C、T、A、G 标记的各个 0.5 ml 微量心管或微量滴定板各孔中。
当液滴挂在离心管壁或微量滴定板孔壁时. 应离心使之沉入底部。

5. 将 5x 标记混合液用冰预冷的水稀释 5 倍，每种测序反应需要 2ul 稀释的标记混合液。

6. 用冰预冷的测序酶稀释缓冲液稀释测序酶，如材料中所述可加，也可不加酵母焦磷酸酶。
毎种模板测序需要测序酶（含 3 单位)。测序酶要始终放置于冰上。



7. 为进行标记反应，在步骤 2 的 10ul 退火反应液中加入如下溶液:

稀释的标记混合液（来自步骤 5)                                    2ul
0.1mol/L 二硫苏糖醇                                                      1ul
[a-³³P]dATP,[a-³²P]dATP 或 [a-³⁵S]dATP                     0.5ul
稀释的测序酶（约 1.6u/ul)                                             2.0ul

轻轻拍打离心管壁或滴定板以便混匀反应物，然后在 20°C 孵育 2~5 min。
稀释的测序时应保存在冰上，不要使其温度升至室温。供应商提供的浓缩酶应贮存于-20°C, 如果置于冰上几小时酶将失活。

8. 在标记反应将近完成时，应于 37°C 预热离心管或微量滴定板以便进行终止反应。这—步很重要。然后，转移 3.5ul 标记反应液到已经预热的、做好标记的、已加入适量的双脱氧混合液（上述步骤 4) 的微量离心管壁或微量滴定板孔壁上。

9. 在室温下，将微量离心管放入微量离心机中（用适合于 0.5 ml 离心管的转头或衔接头，或将其置于去盖的 1.5 ml 离心管中），或将微量滴定板置于有适当衔接头的离心机中，以 2000r/min 离心 C、T、A、G 管或板几秒钟，混匀混合液。然后立即将反应物置于 37°C 加热板或水浴中 3~5 min。

10. 加 4ul 甲酰胺上样缓冲液终止反应。

11. 这些反应物在-20°C 时可最多保存 5 天，也可以用变性凝胶电泳直接分析（见方案 8、9、或 10、11 和 12)。热变性后（100°C,2 min), 在冰上快速冷却。取 C、T、A 和 G 反应物各 3ul 加入测序凝胶的各孔中。