SDS-PAGE实验方法

试剂：

1. 5x样品缓冲液（10ml）:0.6ml 1mol/l的Tris-HCl(pH6.8),5ml 50%甘油，2ml 10%的SDS，0.5ml巯基乙醇，1ml 1%溴酚蓝，0.9ml蒸馏水。可在4℃保存数周，或在－20℃保存数月。

2. 凝胶贮液：在通风橱中，称取丙烯酰胺30g，甲叉双丙烯酰胺0.8g，加重蒸水溶解后，定容到100ml。过滤后置棕色瓶中，4℃保存，一般可放置1个月。

3. pH8.9分离胶缓冲液： Tris 36.3g ，加1mol/l HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH8.9，定容至100ml， 4℃保存。

4. pH6.7浓缩胶缓冲液： Tris 5.98g ，加1mol/l HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH6.7，定容至100ml， 4℃保存。

5. TEMED（四乙基乙二胺）原液。

6. 10%过硫酸铵（用重蒸水新鲜配制）。

7. pH8.3 Tris-甘氨酸电极缓冲液：称取Tris 6.0g，甘氨酸28.8g，加蒸馏水约900ml，调pH8.3后，用蒸馏水定容至1000ml。置4℃保存，临用前稀释10倍。

8. 考马斯亮蓝G250染色液：称100mg考马斯亮蓝G250，溶于200ml蒸馏水中，慢慢加入7.5ml 70%的过氯酸，最后补足水到250ml，搅拌1小时，小孔滤纸过滤。

SDS-PAGE凝胶的有效分离范围

丙烯酰胺浓度（%） 15 12.5 10 7.5 5.0

线性分离范围 15-435kDa 15-60kDa 18-75kDa 30-120 kDa 60-212 kDa

器材

电泳仪，电泳槽，水浴锅，摇床。

样品制备

将蛋白质样品与5X样品缓冲液（20μl＋5μl）在一个Eppendorf管中混合。放入100℃加热5－10min，离心，取上清点样。

电泳

1. 将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净，用ddH2O冲洗数次，再用乙醇擦拭，晾干；

2. 将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer，装好玻璃板；

3. 按如下体积配制10％分离胶8.0 ml，混匀；

ddH2O 3.0 ml

1.0 mol/l Tris-HCl pH=8.8 2.1 ml

30% Acr-Bis 2.8 ml

10% SDS 80 μl

10%AP 56 μl

TEMED 6 μl

4. 向玻璃板间灌制分离胶，立即覆一层重蒸水，大约20 min后胶即可聚合；

5. 按如下体积配制6％浓缩胶3.0 ml，混匀；ddH2O 1.0 mol/l Tris-HClpH=6.8 30%

将上层重蒸水倾去Acr-Bis

2.0 ml 400 μl 600 μl

10% SDS 10% AP TEMED

36μl 24μl 4μl

6. 滤纸吸干，灌制浓缩胶，插入样品梳；

7. 装好电泳系统，加入电极缓冲液，上样20 μl;