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染色体的标本制作及其组型实验

2020.9.15
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

在真核生物中, 染色体的数量和形态具有物种的特异性一直可以作为此物种分类的基本依据之一。染色体作为遗传物质-DNA的载体, 对生物的遗传、变异、进化和个体发生, 以及细胞的增殖和生理过程的平衡控制等都具有十分重要的意义。每一个物种的细胞一般都有一定数目、形状和大小的染色体。将体细胞核中全部染色体按照其大小、着丝粒位置,以至带型有序地排列起来,此模式图象排列即为核型(karyotype)或染色体组型。核型分析均是以中期染色体为标准,对制作出的染色体标本进行照相以获得染色体的显微图象,并将其剪裁排列即成。华裔学者庄有兴(Joe Hin Tjio)和瑞典学者A.Levan合作, 利用低渗法研究胎儿肺组织的染色体标本制做方法,终于在1956年首次确定了人类的染色体数目是46条,而不是前人所主张的48条,这为后来的人类核型研究奠定了基础。
1.实 验 目 的
1.1 初步掌握动物骨髓染色体标本制备基本过程,了解操作步骤的原理。
1.2了解常用实验动物染色体的数目及特点。通过组型实验,掌握染色体组型的基本方法
2.实 验 原 理
凡细胞处于活跃增殖状态,或者经过各种处理后,细胞就可进入分裂的任何动物组织,均可用于染色体分析。在正常动物体内,精巢和骨髓均为是活跃分裂的组织。给动物注射一定剂量的秋水仙碱即可使许多处于分裂的细胞停滞于中期,然后采用常规空气干燥法制备染色体,即可得到大量可分析的染色体标本。本方法简便、可靠,不需要经体外培养和无菌操作,易于推广。骨髓细胞是用于动物细胞遗传学研究很好的材料。但在取材方面,精巢又比骨髓要简易一些,故本实验也选用小鼠的精巢为实验材料。
对于小鼠精巢染色体标本的制作,一般包括以下几个要点: 1. 用一定剂量的秋水仙素破坏纺锤丝的形成,使细胞分裂停滞在中期, 使中期染色体停留在赤道面处; 2. 用低渗法使将细胞膨胀, 以至于在滴片时细胞被胀破, 使细胞的染色体铺展到载玻片上; 3. 空气干燥法可使使细胞的染色体在载片上展平, 经Giemsa染色后便可观察到染色体的显微图象。

染色体组型又名核型,是指根据染色体的长度、形态和着丝粒的位置将中期染色体依照所规定的标准顺序和组次予以系统排列而成的模式图,它代表了一个个体或物种的染色体特征。进行染色体组型主要依据有以下几个参数: 1. 相对长度(relative length): 指单个染色体的长度与包括X染色体在内的单倍体染色体总长度之比,相对长度=单条染色体的长度/(单倍体常染色体+X染色体)的总长度×100%。2. 臂指数(arm index): 指染色体长臂与短臂的比率,臂指数=长臂/短臂。3. 着丝粒指数(centromere index): 指短臂占整个染色体长度的比率,着丝粒指数=短臂/整个染色体长度×100%, 该比率决定了着丝粒在染色体中的相对位置。4. 染色体的臂数: 对于端部着丝粒染色体,臂数为1,其它为2。根据Levan(1964)所制定的人类染色体标准,臂指数在1.0~1.7之间的染色体为中央着丝粒染色体,在1.7~3.0之间为亚中央着丝粒染色体,在3.0~7.0间为亚端部着丝粒染色体,大于7.0为端部着丝粒染色体;着丝粒指数在 50.0~37.5之间的染色体为中央着丝粒染色体,在37.5~25.0之间为亚中央着丝粒染色体,在25.0~12.5之间为亚端部着丝粒染色体,小于12.5为端部着丝粒染色体。
3.实 验 用 品
3.1 材料 小白鼠,蟾蜍或青蛙
3.2 器材
离心机、恒温水浴,显微镜、刻度离心管(10ml)、注射器(1ml)、载玻片、烧杯(400ml)、量筒(100ml)、试管架、镊子、手术剪和手术镊,滴管,10ml小烧杯,试管架,染色用玻璃板, 香柏油,擦镜纸,直尺,复印的染色体标本图。
3.3 试剂
3.3.1. 秋水仙素: 称取秋水仙素10mg加10ml的注射用水,即得0.1%的秋水仙素液, 以此作为原液。在使用时,需将原液稀释50倍,即取0.1ml原液,加4.9ml注射用水,稀释后秋水仙素的浓度为 20?g/ml。
3.3.2. 生理盐水: 哺乳动物及人类为0.9%的NaCl溶液,两栖类为0.7%的NaCl溶液。
3.3.3. Carnoy’s固定液: 甲醇:冰醋酸为3:1, 必须现用现配。
3.3.4. Giemsa染液的配制:
吉姆萨粉(Giemsa stain) l.0g
甘油(AR) 66ml
甲醇(AR) 66ml
将Giemsa粉放入研钵中,先加入少量甘油,研磨至无颗粒为止,然后再将全部甘油倒入,放56℃温箱中2h后,加入甲醇,将配制好的染液密封保存棕色瓶内(最好于0~4℃保存)。


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