核酸提取分离方法
核酸提取分为传统方法和商业化试剂抽提。
传统的方法一般会采用酚/氯仿抽提及乙醇沉淀来提取核酸。
商业化试剂盒方法提取核酸，比较经典的是采用离心柱法，将硅胶膜固定在离心管中，通过离心力或者负压让液体通过硅胶膜，核酸就留在膜上。在经过洗涤、洗脱的步骤得到核酸。商业化试剂盒的应用还能避免试剂污染。
不管是传统的方法，还是商业化试剂盒方法，都需要注意下面这些问题。
温度
核酸是非常敏感脆弱的样品，所以离心机的控温性能要好，才能防止核酸降解。
离心的温度尽量维持在 4 ℃，转子的材料也要尽量选用导热性能好的材料，防止样品温度和设置的温度偏差变大。
角度与离心力
转子的设计角度， 45° 角转是比较优秀的，便于核酸的收集，还能减少样品的损失。离心力设置尽量大于 10,000 x g, 离心力越大，离心时间越短。
其他注意点
● 提取核酸的试剂会有一定的腐蚀性，为了防止试剂腐蚀转子，最好选择带 PTFE 涂层的转子，这种涂层耐酸、耐碱、耐各种有机溶剂。
● 在使用试剂盒抽提的时候，要尽量选用试剂盒专用的 Kit 转子，不需要剪盖，转子边缘采用加宽设计防止打掉离心管盖。
血液(采血管)的离心分离
收集血液之后，一般是对真空采血管进行离心，真空采血管管内为负压并且密封良好。
根据诊断目的的不同，有的时候血液样本也需要进行离心分离处理。
这个时候，也需要用到离心机啦。
温度
对血液样本后续处理方式不同，对温度的要求也不同。
角度与离心力
因为医院需要处理的样本比较多，大通量的离心处理是更有优势的。
一般选用水平转子进行离心分离，通量大，分离效果好，用角转也可以进行分离，不过优势没有水平转子明显。分离所需要的离心力较小，一般小于2,500 x g。比如在《临床化学检验血液标本的收集与处理》要求中，就提到了将相对离心力控制在1,000 x g~1,200 x g。
气密性与防污染
为了安全起见，选用气密性的吊篮，防止采血管破裂产生的气溶胶污染。定期对离心机的吊篮和适配器进行高压灭菌，也能进一步预防污染的发生。
其他注意点
带软加速/刹车功能的离心机，能防止离心分层后的样品重悬。
PBMC 单核细胞的密度梯度离心分离
血液主要由血清和血细胞组成，主要包括红细胞，白细胞和血小板等。白细胞还可以细分为淋巴细胞和单核细胞等。由于这些细胞具有简单的细胞核，统称为外周血单核细胞 (PBMC)。
PBMC 单核细胞可通过 Ficoll 密度梯度离心的方法，从血液中进行分离。
在 Ficoll 密度梯度离心的过程中，需要注意的有：
● 使 Ficoll-Paque Plus 和 PBS 升至室温，并用 70% 乙醇消毒血袋外部，良好的温度 (18-20℃) 控制有利于稳定 Ficoll 的密度，可以实现更好的分离效果
● 血液与 PBS 的比例保持 1：1，拧紧盖后颠倒混合几次
● 可以使用 ep 25 mL 锥底管，并轻轻的将血液/PBS 混合物铺置 Ficoll 上
● 离心参数：400 x g, 20 ℃，加减档 0/0，防止离心结束后的刹车震动，降低重悬，更利于良好分层。随后开启“Atset”功能，可以在达到指定转速后开始计时，离心 30 分钟
● 使用 PBS 洗涤细胞，离心除去残余的 Ficoll 液，400 x g, 20 ℃，10 分钟，重复几次
细胞培养液的离心分离
在收集我们精心培育的细胞的时候，一般会选择锥底形状的离心管或者离心瓶，并且采用低速的水平转子来进行离心。
为了保持细胞的完整性，离心的时候要尽量避免使用急刹车。选择带软刹车/加速(多档刹车/加速)的离心机，可以避免收集到的细胞重悬。
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