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免疫组化专题:流式细胞仪检测技术实验(一)

2020.6.15
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

标签: 流式 细胞仪

流式细胞仪(flow cytometer)是一种能够探测和计数以单细胞液体流形式穿过激光束的细胞检测装置,由于在检测中使用的细胞标志示踪物质为荧光标记物,因此,用来分离、鉴定细胞的流式细胞仪有被称为荧光激活细胞分类仪,是分离和鉴定细胞群及亚群的一种强而有力的应用工具。

实验方法
实验方法原理

流式细胞仪的使用一般分为三个步骤。第一,是仪器前阶段,包括试剂的准备,细胞制备、细胞的荧光染色;第二,是流式细胞仪阶段,主要是仪器的操作;第三,是结果分析阶段。

实验材料

淋巴细胞 外周血的白细胞

试剂、试剂盒

FACS缓冲液 PBS 叠氮钠溶液 仪器缓冲液 FACS清洁液 FACS洗净液

仪器、耗材

流式细胞仪

实验步骤

一、细胞和试剂的准备


1.  细胞样品:来源淋巴细胞或外周血的白细胞。


2.  荧光标记单克隆抗体:常用的有FITC(fluorescein -isothiocyanate)和PE(phycoerythrin)标记的单克隆抗体。


3.  封闭抗体:抗Fc受体抗体

 

4.  FACS缓冲液:

1×PBS  950 ml

FCS  40 ml

10%叠氮钠溶液  10 ml


5.  仪器缓冲液(FACS-flow):仪器厂家提供


6.  FACS清洁液(FACS clean )和FACS洗净液(FACS rinse):仪器厂家提供。


二、操作步骤
 

1.  单细胞悬液的制备:将1×105~1×107的细胞放入1.5 m l离心管中3000 r/min 离心5分钟,弃上清;加入FACS缓冲液100 μl 悬浮细胞。


2.  封闭细胞表面Fc受体:在步骤1中加入Fc受体抗体0.5 μl(0.5 mg/ml),水浴3分钟。


3.  细胞与荧光抗体结合:在步骤2中加入荧光抗体1 μl(0.5 mg/ml),水浴30分钟。


4.  洗细胞去除游离的荧光抗体:在步骤3中加入FACS缓冲液350 μl,轻轻混匀,3000 r/min,离心5分钟,弃上清,重复步骤(4)2次。


5.  上样前处理:取100 μl 仪器缓冲液加入步骤(4)获得的细胞沉淀中,轻轻混匀悬浮细胞,将细胞悬液移入FACS专用管中,准备进行仪器检测和分析。


三、仪器的操作


以FACSCaliburTM(BD Biosciences)仪器为例。仪器主要分为主机部分(包括激光激活源,射流,射线探测器)和计算机部分(CELLQuest softwere)。仪器的操作分为使用前的准备、使用中的操作和使用后的清洗。


1.使用前的准备


(1)打开电源:包括系统电源和主机部分电源。


(2)检查供液槽和废液槽:供液槽应含足够的仪器缓冲液,废液槽应在上次使用后清洗干净。


(3)使机器处于负亚状态,才能使细胞悬液被吸入至机器的吸管口。


(4)机器处于可应用状态时,指示灯会变成绿色。


2.使用中的操作


(1)计算机部分—使用CELLQuest程序系统软件:


①设定所要检测细胞的数量:一般设10 000~20 000个细胞。


②命名本次实验:一般含使用者的姓名和实验日期。


③打开记数部分:显示进入的细胞数以及检测一定量的细胞所需要的时间。


④将微机与主机连接:控制检测时的预检测和实际检测。


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