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胰岛素受体的溶解及活性测定实验

2020.8.17
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王辉

致力于为分析测试行业奉献终身

试剂、试剂盒 纯化的鼠肝质膜牛血清白蛋白 [125I] 胰岛素猪胰岛素牛γ-球蛋白聚乙二醇 6000溶液 B 溶液 C 结合缓冲液

仪器、耗材 Ti 70 转头和带盖的聚丙烯离心管

实验步骤

材料与设备


纯化的鼠肝质膜(得自实验 1)


Ti 70 转头和带盖的聚丙烯离心管


牛血清白蛋白(BSA,1%)


[125I] 胰岛素(受体级,DuPont NEN NEX 196)


猪胰岛素〔17.5umol/L(0.1 mg/ml), 于 0.001mol/LHCl 中〕(Sigma Chemical Co.I3505)


牛γ-球蛋白(0.4%,于溶液 B)(Miles Laboratories Co.82-041-2)


聚乙二醇 6000(20% 水溶液)


试剂


溶液 B


溶液 C


结合缓冲液(溶解受体用)


(配方,见"试剂的配制" PP.234~240)


操作程序


用 TritonX-100 溶解胰岛素受体


比较 TritonX-100 与其他去垢剂从鼠肝质膜上溶解胰岛素受体的效率,其结果见表 4-3。


1)取 100~150 mg 纯的鼠肝质膜,与 10 ml 溶液 B 混合,再加 4 ml 溶液 C,4°C 孵育 30 min。


2) 悬液 200000 g(Ti 70 转头,45000r/min) 离心 30 min, 用巴氏吸管收集上清,注意不要搅动沉淀。

注: 常存在 TritonX-100 不溶的沉淀物,紧粘于管底。


胰岛素对溶解受体结合活性的测定


1) 于微量离心管中建立如下反应体系:


从 A 管得出总的结合量,从 B 管得出非特异结合量。


                                                    特异结合量=总结合量-非特异结合量。


注:受体纯的 [125I] 胰岛索(NEX 196) 购自 DuPont NEN 公司,比放射性强度为 2200uCi/nmol。胰岛素浓度为 35.5nmol/L。在本试验中,必须用结合缓冲液将 [125I] 胰岛素储液稀释至 5nmol/L。在溶解受体的受体结合试验中需 [125I] 胰岛素的终浓度为 500pmol/L,相当于 300-ul 反应体系中加入 30ul 5nmol/L 的溶液。


2) 反应体系在 4°C 孵育16 h, 或室温孵育 2 h。


3) 沉淀,将受体结合的胰岛素与游离胰岛素分开。加入 75ul 含 0.4% 牛γ-球蛋白的溶液 B,4°C 孵育 5 min。再加 375ul 20% 聚乙二醇 6000,4°C 孵育 10 min。混合物于微型离心机中离心 10 min, 收集沉淀。尽量除尽各管上清,计数沉淀的放射性强度。


注:在纯化过程中,虽常用聚乙二醇沉淀法测定胰岛索受体数,但此法多半会低估结合位点的绝对数,因为沉淀的只是胰岛素-受体复合物的一部分(Finn 等,1984)。为测定胰岛素对其受体的亲和性,要加入几种不同浓度的未标记胰岛素. 使胰岛索终浓度为 500pmol/L 至 200nmol/L,如本单元实验 1 所述。


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