主要用途
YIJI冰冻切片神经元高尔基法染色试剂是一种旨在使用亲银还原技术，分析固定处理的冰冻组织切片中神经元（neuron）、锥体细胞（pyramidal cell）、胶质细胞（glia cell）、少突触胶质细胞（oligodendrocyte）和其它突起（process）尤其树突（dendrites）形态学的权威而经典的技术方法。该技术经过精心改良传统方法、成功实验证明的。主要适用于冰冻脑组织或外周神经组织切片的相关神经细胞检测。广泛用于动物脑神经病理生理解剖学的研究。产品严格无菌，即到即用，操作简捷，性能稳定，显色清晰。
技术背景
意大利科学家高尔基（Camillo Golgi）于1873年发明了神经细胞黑色反应的浸银染色技术，从而开辟了神经系统形态结构、演变、单系发生、构建以及疾病等学科研究，并建立了神经学说。脑神经组织经固定，亲银染色后，呈现部分神经细胞完全染色，而其它神经细胞没有任何着色的高度选择性染色。
产品内容
YIJI固着液（Reagent A） 毫升
YIJI氧化液（Reagent B） 毫升
YIJI营养液（Reagent C） 毫升
YIJI强化液（Reagent D） 毫升
YIJI脱水液（Reagent E） 毫升
YIJI清理液（Reagent F） 毫升
YIJI染色液（Reagent G） 毫升
产品说明书 1份
保存方式
保存在4℃冰箱里，避免光照；有效保证3月
用户自备
1.5毫升离心管：用于工作液配制的容器
无菌手术刀和镊子：用于解剖动物脑组织
小型玻璃染色缸或60毫米玻璃培养皿：用于组织切片处理的容器
火棉胶（collodion）：用于保护固着处理后的组织样品
切片机：用于组织切片
明胶化载玻片和盖玻片：用于切片后铺片
中性树脂：用于切片封片
光学显微镜：用于切片染色后观察分析
实验步骤
样本固着处理
常规麻醉动物和手术（建议：使用生理盐水由心脏处灌注三次，每次60毫升，去除血液直至澄清）
使用适量的YIJI固着液（Reagent A）灌注处理
即刻小心取出脑组织
小心放进到xx毫升YIJI固着液（Reagent A）里
室温下浸泡孵育1小时
用无菌手术刀将脑组织切成0.5厘米厚的组织块
即刻用无菌镊子夹起组织块
小心转移到xx毫升YIJI氧化液（Reagent B）里（20毫升/2块组织块）
室温下浸泡孵育2周，避免光照
小心转移到xx毫升YIJI营养液（Reagent C）里
室温下浸泡孵育48小时，避免光照
小心转移到xx毫升YIJI强化液（Reagent D）里
室温下浸泡孵育48小时，避免光照（注意：可以孵育1周）
用绵纸吸干组织快
使用30％蔗糖处理、OCT包埋或使用用户自备的火棉胶（8％collodion）包埋
放进－20℃冰箱里
取出组织块，在－20℃条件下进行缓慢冰冻切片，为20至100微米厚，并铺片在明胶化载玻片上
置于－20℃冰箱里保存
样本染色处理
取出待测的20至100微米厚的冰冻组织切片
小心加上xx微升YIJI脱水液（Reagent E）在切片上，铺满整个样品表面
室温下孵育2分钟
小心移去切片上的YIJI脱水液（Reagent E）
重复实验步骤2至4一次
室温下，小心将切片置入xx毫升YIJI清理液（Reagent F）中孵育2分钟
小心移去切片上的YIJI清理液（Reagent F）
小心加上xx微升YIJI染色液（Reagent G），铺满整个切片样品表面
室温下孵育48小时，直至呈现黑色，即刻终止，避免光照（注意：期间可以在显微镜下观察；避免干化）
小心移去切片上的YIJI染色液（Reagent G）
室温下，小心将切片置入xx毫升YIJI清理液（Reagent F）中孵育2分钟
小心移去切片上的YIJI清理液（Reagent F）
（选择步骤）进行复染操作（建议使用YIJI甲苯酚紫（CRESYL VIOLET）复染试剂盒－YIJI80052）
透明处理
放上盖玻片或封片（中性树脂）
即刻在一般光学显微镜下观察：神经元、锥体细胞、胶质细胞、少突触胶质细胞（椭圆形如同串珠）和其它突起，呈现黑色（如果复染――细胞核呈现蓝色，胞浆尼氏（体）物质呈现粉红至紫色）
注意事项
本产品为20次操作
操作时，须戴手套
铺片须使用明胶化载玻片，否则染色会掉片：第一用毛笔涂刷；第二保持湿润3小时；第三用PARAFIN包裹后压片
切片建议100至200微米，过厚和过薄不利于检测神经细胞
有的组织采用冰冻切片易破碎，建议第一调整切片温度；第二切片厚度在150微米以上；如果无法解决，建议使用石蜡切片等
建议使用玻璃染色缸
每次更换试剂溶液时，保持切片面基本晾干
试剂溶液在切片表面时，避免有气泡存在，同时确保铺满切片表面
整个操作，在避光状态下进行
染色完成后，即刻进行光学显微镜观察
样品染色后保存，避免光照
本公司提供系列组织细胞神经系统成分染色试剂产品
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